References

rmt

Общая реаниматология

General Reanimatology

1813-97792411-7110

FSBI "SRIGR" RAMS

10.15360/1813-9779-2008-5-79

rmt-664

Research Article

ПРАКТИКУЮЩЕМУ ВРАЧУ

FOR PRACTIONER

Правила забора и хранения крови для лабораторных исследований

Rules of Blood Sampling and Storage for Laboratory Studies

Муронов

А. Е.

Muronov

A. Ye.

Заболотских

И. Б.

Zabolotskikh

I. B.

2008

20102008

Том IV № 5 2008 г.

7979

2008

Муронов А.Е., Заболотских И.Б.

Muronov A.Y., Zabolotskikh I.B.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/664

Представлен обзор и систематизация рекомендаций, касающихся снижения количества дефектов, происходящих с пробой крови после ее забора в преаналитической фазе, и влияния этих сдвигов на правильность интерпретации клинического состояния больного в постаналитической фазе исследования. Материал и методы. В обзорной статье рассмотрены публикации, касающиеся вопросов появления наиболее частых дефектов при заборе крови для оценки кислотно-основного, электролитного, газового и метаболического состояний, а также методы их профилактики и устранения. Основу этих мероприятий составляют: определение клинических показаний к исследованию, выбор источника забора крови, подготовка пациента к забору и определение времени его проведения. Максимально возможного соответствия исследуемых параметров в отобранной пробе крови их истинным величинам in vivo позволяет добиться соблюдение ряда технических факторов, к числу которых относят: обеспечение анаэробных условий забора крови, адекватное ее перемешивание и гомогенизация, профилактика разведения, образования сгустков, возникновения гемолиза, а также учет влияния на пробу раствора гепарина и времени ее хранения. Четкое представление о влиянии условий забора на пробу отбираемой для исследования крови, состояния пациента, а также изменений, происходящих при ее хранении, позволяет клиницисту располагать максимально возможной достоверной информацией о КОС, газовом, электролитном, метаболическом гомеостазе и принимать на их основе взвешенные решения по проведению или изменению интенсивной терапии. Ключевые слова: правила забора крови, дефекты забора крови, преаналитическая фаза исследования, газовый состав крови, кислотно-основное состояние, содержание электролитов в крови.

Objective: to review and to systematize the recommendations on reducing the incidence of defects occurring with a sample of blood after its sampling in the preanalytical phase and the impact of these shifts on the correct interpretation of a patient’s clinical status in the postanalytical phase of a study. Materials and methods. The review considers reports on the occurrence of the most common defects at blood sampling to evaluate acid-base, electrolytic, gas, and metabolic states and methods for their prevention and elimination. These measures are based on the determination of clinical indications for a blood test, the choice of a source of blood sampling, the preparation of a patient for this procedure, and the timing of its performance. The maximally possible agreement between the study parameters in the taken blood sample and their actual values in vitro can be achieved by following a number of technical factors, including the provision of anaerobic conditions for sampling the blood, its adequate mixing and homogenization, the prophylaxis of dilution and the prevention of clot formation and hemolysis, as well as by the consideration of their influence on a heparin solution sample and the time of its storage. A clear idea on the influence of sampling conditions on the sample taken to study blood, a patient’s status, and changes occurring with sample storage allows a clinician to have the maximally possible reliable information on acid-base balance, gaseous, electrolytic, and metabolic homeostasis and to take their based weighed decisions to perform or correct intensive care. Key words: blood sampling rules, blood sampling defects, preanalytical study phase, blood gas composition, acid-base balance, blood electrolyte levels.

References1

Sasse S. A., Chen P. A., Mahutte C. K.Variability of arterial blood gases over time in stable medical ICU patients. Chest 1994; 106: 187—193.

Ellstrom K.Blood loss associated with phlebotomy in the ICU. Heart Lung 1989; 18: 307—308.

Muakkassa F. F., Rutledge R., Fakhry S. M. et al.ABGs and arterial lines: The relationship to unnecessarily drawn arterial blood gas samples. J. Trauma 1990; 30: 1087—1095.

Gross R. L., Bellinger R. P.Arterial blood gas interpretation. In: Textbook of Critical Care 200

Task force on guidelines, society of critical care medicine: Guidelines for standards of care for patients with acute respiratory failure on mechanical ventilatory support. Crit. Care Med. 1991; 19: 275—278.

Сайкс М. К., Мак Никол М. У., Кэмпбелл Э. Дж. М.Дыхательная недостаточность. Пер. с англ. Под ред. проф. В. А. Гологорского. М.: Медицина; 1974.

Назаренко Г. И., Кришкун А. А.Лабораторные методы диагностики неотложных состояний. М.: Медицина; 2002.

Титов В. Н.Контроль качества в клинической биохимии. Клинич. лаб. диагностика 1994; 3: 44—47.

Дементьева И. И.Клинические аспекты состояния и регуляции кислотно-основного гомеостаза. М.: ЮНИМЕД-пресс; 2002.

Boone D. J.Governmental perspectives on evaluating laboratory performance. Clin. Chem. 1993; 39: 1461—1467.

Fulmer J. D., Snider G. L.ACCP-NHLBI national conference on oxygen therapy. Chest 1984; 86: 234—247.

Raff in T. A.Indications for arterial blood gas analysis. Ann. Intern. Med. 1986; 105: 390—398.

Малышев В. Д.Кислотно-основное состояние и водно-электролитный баланс в интенсивной терапии. М.: ОАО Изд-во Медицина; 2005.

Hess D.Газы артериальной крови. В кн.: Парсонз П. Э., Хеффнер Д. Э. (ред.) Секреты пульмонологии. М.: МЕДпресс-информ; 2004. 45—54.

Canham E. M.Исследование газового состава крови. В кн.: Парсонз П. Э., Винер-Крониш Дж. П., Максудова А. Н. (ред.) Секреты неотложной помощи. М.: МЕДпресс-информ; 2006. 43—46.

Salem M., Chernow B., Burke R. et al.Bedside diagnostic blood testing: Its accuracy, rapidity and utility in blood conservation. JAMA 1991; 266: 382—389.

Баранов В. Л, Куренкова И. Г., Казанцев В. А., Харитонов М. А.Исследование функции внешнего дыхания. СПб.: Элби-СПб.; 2002.

Дембо А. Г.Недостаточность функции внешнего дыхания. Л.: Гос. изд-во мед. лит. МЕДГИЗ; 1957.

Штефан Х.Анализ газов крови. В кн.: Недашковский Э. В. (ред). Освежающий курс лекций. Выпуск 6. Архангельск: Архангельская гос. мед. академия; 2000. 132—141.

Марини Д. Дж., Уиллер А. П.Медицина критических состояний. М.: Медицина; 2002.

Pearse R. M., Rhodes A.Mixed and central venous oxygen saturation. In: Vincent J. -L. (ed.) Yearbook of intensive care and emergency medicine. Springer-Verlag. Berline, Heidelberg, N. Y.; 2005.

ЕфуниС. Н., ШпекторВ. А.Гипоксические состояния. Механизмы развития и пути коррекции. В кн.: Ефуни С. Н. (ред.) Руководство по гипербарической оксигенации (теория и практика клинического применения). М.: Медицина; 1986. 5—28.

Forsyth R., HoffbrandB., MelmonК.Re-distribution of cardiac output during hemorrhage in the unanesthetized monkey. Circ. Res. 1970; 27: 311—320.

Edwards J. D., Mayall R. M.Importance of the sampling site for measurement of mixed venous oxygen saturation in shock. Crit. Care Med. 1998; 26: 1356—1360.

Glamann D. B., Lange R. A., Hillis L. D.Incidence and significance of a «step-down» in oxygen saturation from superior vena cava to pulmonary artery. Am. J. Cardiol. 1991; 68: 695—697.

Dongre S. S., McAslan T. C., ShinВ.Selection of the source of mixed venous blood samples in severely traumatized patients. Anesth. Analg. 1977; 56: 527—532.

Reinhart K., Rudolph T., Bredle D. L. et al.Comparison of central-venous to mixed-venous oxygen saturation during changes in oxygen supply/demand. Chest 1989; 95: 1216—1221.

Schou H., Perez de Sa V., Larsson A.Central and mixed venous blood oxygen correlate well during acute normovolemic hemodilution in anesthetized pigs. Acta Anaesthesiol. Scand. 1998; 42: 172—177.

Martin C., Auffray J.P., Badetti C. et al.Monitoring of central venous oxygen saturation versus ixed venous oxygen saturation in critically ill patients. Intensive Care Med. 1992; 18: 101 — 104.

Reinhart K., Kuhn H. J., Hartog C., Bredle D. L.Continuous central venous and pulmonary artery oxygen saturation monitoring in the critically ill. Intensive Care Med. 2004; 30: 1572—1578.

Soni N.Swan song for the Swan-Ganz catheter? BMJ 1996; 313: 763—764.

Хиггинс К.Расшифровка клинических лабораторных анализов. Под ред. проф. В. Л. Эмануэля. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний; 2004.

Levin P. D., Gozal Y.Arterial cannulation and invasive blood pressure measurement. In: Critical сare; 2005.

Левшанков А. И.Респираторная поддержка при анестезии, реанимации и интенсивной терапии. СПб.: СпецЛит; 2005.

Latham P., Whitten C. W.Мониторинг и манипуляции. В кн.: Дюк Д. Секреты анестезии. Под общ. ред. А. П. Зильбера, В. В. Мальцева. М.: МЕДпресс-информ; 2005.

Shapiro B. A., Harrison R. A., Cane R. D., Templin R.Clinical application of blood gases. In: Year book medical publishers. 4th ed. Chicago; 1989.

National committee for clinical laboratory standards: Procedures for the collection of diagnostic blood specimens by skin puncture. 3rd ed. NCCLS Document H4-A3; 1991.

Burnett R. W., Covington A. K., Fogh-Anderson N. et al.Recommendation on whole blood sampling, transport, and storage for simultaneous determination oh pH, blood gases, and electrolytes. JIFCC 1994; 6 (4): 115—120.

Mueller R. G., Lang C. E., Beam J. M.Bubbles in samples for blood gas determination — a potential source of error. Am. J. Clin. Pathol. 1976; 65: 242—249.

Harsten A., Berg B., Inerot S., Muth L.Importance of correct handling of samples for the results of blood gas analysis. Acta Anaesthesiol. Scand. 1988; 32: 365—368.

Muller-Plathe O.Preanalytical aspects in STAT analysis. Blood Gas. News 1998; 7: 4—11.

Toffaletti J., Ernst P., Hunt P., Abrams B.Dry electrolyte-balanced heparinized syringes evaluated for determining ionized calcium and other electrolytes in whole blood. Clin. Chem. 1991; 10: 1730—1733.

Borders J. C., Eisele D. W., Lyles A.Diagnostic blood loss in the patient undergoing head and neck surgery. Arch. Otolaryngol. Head. Neck. Surg. 1994; 120: 707—710.

Goodwin N. M., Schreiber M. T.Effects of anticoagulants on acid-base and blood gas estimations. Crit. Care Med. 1979; 7 (10): 473—474.

Grawford A. G.Liquid versus non-liquid heparinization of blood samples. Resp. Ther. 1983; 5: 103—105.

Hutchison A. S., Ralston S. H., Dryburgh F. J. et al.Too much heparin: possible source of error in blood gas analysis. Brit. Med. J. 1983; 287: 1131—1132.

Dennis R. C., Ng R., Yeston N. S. et al.Effect of sample dilutions on ABG. Crit. Care Med. 1985; 13: 1067—1068.

Rickard C. M., Couchman B. A., Schmidt S. J. et al.A discard volume of twice the deadspace ensures clinically accurate arterial blood gases and electrolytes and prevents unnecessary blood loss. Crit. Care Med. 2003; 31 (6): 1654—1658.

Low L. L., Harrington G. R., Stolzfus D. P.The effects of arterial lines on blood-drawing practices and costs in intensive care units. Chest 1995; 108: 216—219.

Silver M.J., Li Y-H., Gragg I. A. et al.Reduction of blood loss from diagnostic sampling in critically ill patients using a blood-conserving arterial line system. Chest 1993; 104: 1711 — 1715.

Alazia M., ColavolpeJ. C., Botti G. et al.Blood loss from diagnostice laboratory tests performed in intensive care units: Preliminary study. Ann. Fr. Anesth. Reanim. 1996; 15: 1004—1007.

Foulke G. E., Harlow D. J.Effective measures for reducing blood loss from diagnostic laboratory tests in intensive care unit patients. Crit. Care Med. 1989; 17: 1143—1145.

Smoller B. R., Kruskall M. S.Phlebotomy for diagnostic laboratory tests in adults: Pattern of use and effect on transfusion requirements. N. Engl. J. Med. 1986; 314: 1233—1235.

Corwin H. L., Parsonnet K. C., Gettinger A.RBS Transfusion in the ICU: Is there a reason? Chest 1995; 106: 767—771.

Weiss M., Fischer J., Boeckmann M. et al.Evaluation of a simple method for minimizing iatrogenic blood loss from discard volumes in critically ill newborns and children. Intensive Care Med. 2001; 27: 1064—1072.

Clapham M. C. C., Willis N., Mapleson W. W.Minimum volume discard for valid blood sampling from indwelling arterial cannulae. Br. J. Anaesth. 1987; 12: 232—235.

Preusser B. A., Lash J., Stone K. S. et al.Quantify the minimum discard sample required for accurate ABGs. Nurs. Res. 1989; 38: 276—279.

Blonshine S., Alberti R., Olesinski R. L.Procedures for the collection of arterial blood specimens; Approved standard — Third Edition, NCCLS document H11-A3 1999; 12: 8.

A., Hickling K.Errors in measuring blood gases in the intensive care unite: Effect of delay in estimation. J. Crit. Care 2003; 18: 31—37.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.