КИНЕТИКА МОЧЕВИНЫ В ОРГАНИЗМЕ ПОСЛЕ РЕЗЕКЦИИ ПЕЧЕНИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-23-31
Аннотация
Цель. Изучить кинетику мочевины в организме после резекции печени в эксперименте
Материал и методы. Опыты проведены на 45 белых крысах (самках) массой 180—220 г. Резекцию печени (РП) проводили под эфирным наркозом, удаляя 15—20% от массы органа. Исследовали содержание мочевины в биологических жидкостях (артериальная кровь, кровь v. porta, v. hepatica, v. renalis, желчь холедоха, моча) и тканях висцеральных органов (щитовидная железа, легкие, сердце, печень, почки, селезенка, желудок, кишечник) на 3и, 7е и 14е сутки после РП.
Результаты. РП, снижая концентрацию мочевины в крови v. hepatica, не приводит к аналогичным изменениям в артериальной крови. Это сопровождается увеличением ее реабсорбции в почках и повышением концентрации в крови v. porta, которое в зависимости от сроков послеоперационного периода достигается либо снижением экскреции мочевины в просвет тонкого кишечника, либо увеличением ее образования энтероцитами с дальнейшим поступлением метаболита в портальный кровоток. Если на 3и сутки после РП поступление мочевины из гепатоцитов в желчевыводящую систему печени не изменялось, то на 7е сутки оно увеличивалось, а на 14е тормозилось. РП не вызывала изменения содержания мочевины в ткани желудка, но приводило к увеличению ее концентрации в ткани двенадцатиперстной и толстой кишок. Не влияя на содержание мочевины в сердечной мышце, РП вызывала увеличение ее концентрации в легких и щитовидной железе на 3и, 7е и 14 сутки послеоперационного периода. На фоне отсутствия аналогичных изменений в артериальной крови это указывает на стимуляцию образования мочевины клетками этих органов или на ретенционную задержку метаболита в них.
Заключение. РП не только изменяет кинетику мочевины в органах портальной системы, но и активирует внепеченочные механизмы, направленные на предотвращение развития дефицита мочевины в артериальной крови в результате нарушения ее поступления из оперированного органа в центральный кровоток.
Об авторах
П. Н. CавиловРоссия
Россия, 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10
Россия, 392524, Тамбовская область, Тамбовский рн, с. Покровопригородное, ул. Полевая, д. 4
Т. Л. Алейникова
Россия
кафедра биохимии, Россия, 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2
Список литературы
1. Косенко Е.А., Каминский Ю.Г. Клеточные механизмы токсичности аммиака. М.: ЛКИ; 2008: 288.
2. Савилов П.Н., Молчанов Д.В. Влияние гипербарической оксигенации на аммиакэкскретирующую функцию почек при резекции печени в эксперименте. Общая реаниматология. 2015; 11 (2): 56–63. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201525663
3. Решетняк В.И. Печеночноклеточная недостаточность Общая реаниматология. 2005; 1 (3): 68–79. http://dx.doi.org/10.15360/18139779200536879
4. Савилов П.Н. Роль и место гипербарической оксигенации при печеночной недостаточности. Общая реаниматология. 2009; 5 (5): 72–79. http://dx.doi.org/10.15360/181397792009572
5. Северин Е.С., Алейникова Т.Л., Осипов, Е.В., Силаева С.А. Биологическая химия. М.: МИА; 2008.
6. Савилов П.Н. Глутаминовый цикл печени после ее резекции. Вопросы биол. мед. фармацевт. химии. 2010; 8 (7): 53–59.
7. Мансурова И.Д., Калетина Л.Г. Энзимограмма сыворотки крови и распределение ферментов в структурах гепатоцита. В кн.: Блюгер Е.Ф. (ред.). Успехи гепатологии. Рига: РМИ; 1971: 80–90.
8. Richterrich D. Clinical chemistry. N.Y.: Academia Press; 1962: 19.
9. Эве К., Карбах У. Функции желудочнокишечного тракта. В кн.: Шмидт Р., Тевс Г. (ред.). Физиология человека. т.3. М.: Мир; 2012: 740–784.
10. Владимиров Ю.А., Проскурина Е.В. Лекции по биофизике М.: Академкнига; 2007.
11. Детьен П. Физиология почек. В кн.: Шмидт Р., Тевс Г. (ред.). Физиология человека. т.3. М.: Мир; 2012: 785811.
12. Савилов П.Н. Состояние аммиакобезвреживающей функции гепатоцитов после резекции печени в эксперименте. Патол. физиол. и эксперим. терапия. 2002; 4: 11–13. PMID: 12638422
13. Савилов П.Н. Гипероксический саногенез при резекции печени. Таврический мед.биол. вестник. 2012; 15 (3, ч.2): 374.
14. Кричевская А.А., Лукаш А.И., Броновицкая З.Г. Биохимические механизмы кислородной интоксикации. РостовнаДону: РГУ; 1980: 116.
15. Stiffler D.F., Hawk C.T., Fowler B.C. Renal excretion of urea in the salamander, Ambystoma tigrinum. J. Exp. Zool. 1980; 213 (2): 205–212. http://dx.doi.org/10.1002/jez.1402130207. PMID: 7462970
16. Чернышева М.Д., Малыгин А.М., Фель В.Я. Индукция аргиназной активности в спленоцитах мышей С3НА при частичной гепатэктомии Цитология. 1985; 27 (2): 209– 212. PMID: 3992661
17. Леонов А.Н. Гипероксия. Адаптация. Саногенез. Воронеж: ВГМА; 2006: 190.
18. Adcock M.W., O’Brien W.E. Molecular cloning of cDNA for rat and human carbamyl phosphate synthetaseI. J. Biol. Chem. 1984; 259 (21): 13471–13476. PMID: 6208196
19. Молчанов Д.В. Почки при гипероксии. М.: Бином; 2015: 160.
20. Савилов П.Н. Динамика азотистых метаболитов в ткани щитовидной железы при резекции печени. Галицький лiкарський вiсник —IваноФранкiвськ. 2013; 20 (2): 100– 102.
Рецензия
Для цитирования:
Cавилов П.Н., Алейникова Т.Л. КИНЕТИКА МОЧЕВИНЫ В ОРГАНИЗМЕ ПОСЛЕ РЕЗЕКЦИИ ПЕЧЕНИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ. Общая реаниматология. 2016;12(5):23-31. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-23-31
For citation:
Savilov P.N., Aleinikova T.L. The Kinetics of Urea in the Body after Liver Resection in the Experiment. General Reanimatology. 2016;12(5):23-31. (In Russ.) https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-23-31