Preview

Общая реаниматология

Расширенный поиск

КИНЕТИКА МОЧЕВИНЫ В ОРГАНИЗМЕ ПОСЛЕ РЕЗЕКЦИИ ПЕЧЕНИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-23-31

Полный текст:

Аннотация

Цель. Изучить кинетику мочевины в организме после резекции печени в эксперименте

Материал и методы. Опыты проведены на 45 белых крысах (самках) массой 180—220 г. Резекцию печени (РП) проводили под эфирным наркозом, удаляя 15—20% от массы органа. Исследовали содержание мочевины в биологических жидкостях (артериальная кровь, кровь v. porta, v. hepatica, v. renalis, желчь холедоха, моча) и тканях висцеральных органов (щитовидная железа, легкие, сердце, печень, почки, селезенка, желудок, кишечник) на 3и, 7е и 14е сутки после РП.

Результаты. РП, снижая концентрацию мочевины в крови v. hepatica, не приводит к аналогичным изменениям в артериальной крови. Это сопровождается увеличением ее реабсорбции в почках и повышением концентрации в крови v. porta, которое в зависимости от сроков послеоперационного периода достигается либо снижением экскреции мочевины в просвет тонкого кишечника, либо увеличением ее образования энтероцитами с дальнейшим поступлением метаболита в портальный кровоток. Если на 3и сутки после РП поступление мочевины из гепатоцитов в желчевыводящую систему печени не изменялось, то на 7е сутки оно увеличивалось, а на 14е тормозилось. РП не вызывала изменения содержания мочевины в ткани желудка, но приводило к увеличению ее концентрации в ткани двенадцатиперстной и толстой кишок. Не влияя на содержание мочевины в сердечной мышце, РП вызывала увеличение ее концентрации в легких и щитовидной железе на 3и, 7е и 14 сутки послеоперационного периода. На фоне отсутствия аналогичных изменений в артериальной крови это указывает на стимуляцию образования мочевины клетками этих органов или на ретенционную задержку метаболита в них.

Заключение. РП не только изменяет кинетику мочевины в органах портальной системы, но и активирует внепеченочные механизмы, направленные на предотвращение развития дефицита мочевины в артериальной крови в результате нарушения ее поступления из оперированного органа в центральный кровоток.

Об авторах

П. Н. Cавилов
Воронежский государственный медицинский университет им. Н. Н. Бурденко Тамбовская Центральная районная больница
Россия

Россия, 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10

Россия, 392524, Тамбовская область, Тамбовский рн, с. Покровопригородное, ул. Полевая, д. 4



Т. Л. Алейникова
Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России
Россия

кафедра биохимии, Россия, 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2



Список литературы

1. Косенко Е.А., Каминский Ю.Г. Клеточные механизмы токсичности аммиака. М.: ЛКИ; 2008: 288.

2. Савилов П.Н., Молчанов Д.В. Влияние гипербарической оксигенации на аммиакэкскретирующую функцию почек при резекции печени в эксперименте. Общая реаниматология. 2015; 11 (2): 56–63. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201525663

3. Решетняк В.И. Печеночноклеточная недостаточность Общая реаниматология. 2005; 1 (3): 68–79. http://dx.doi.org/10.15360/18139779200536879

4. Савилов П.Н. Роль и место гипербарической оксигенации при печеночной недостаточности. Общая реаниматология. 2009; 5 (5): 72–79. http://dx.doi.org/10.15360/181397792009572

5. Северин Е.С., Алейникова Т.Л., Осипов, Е.В., Силаева С.А. Биологическая химия. М.: МИА; 2008.

6. Савилов П.Н. Глутаминовый цикл печени после ее резекции. Вопросы биол. мед. фармацевт. химии. 2010; 8 (7): 53–59.

7. Мансурова И.Д., Калетина Л.Г. Энзимограмма сыворотки крови и распределение ферментов в структурах гепатоцита. В кн.: Блюгер Е.Ф. (ред.). Успехи гепатологии. Рига: РМИ; 1971: 80–90.

8. Richterrich D. Clinical chemistry. N.Y.: Academia Press; 1962: 19.

9. Эве К., Карбах У. Функции желудочнокишечного тракта. В кн.: Шмидт Р., Тевс Г. (ред.). Физиология человека. т.3. М.: Мир; 2012: 740–784.

10. Владимиров Ю.А., Проскурина Е.В. Лекции по биофизике М.: Академкнига; 2007.

11. Детьен П. Физиология почек. В кн.: Шмидт Р., Тевс Г. (ред.). Физиология человека. т.3. М.: Мир; 2012: 785811.

12. Савилов П.Н. Состояние аммиакобезвреживающей функции гепатоцитов после резекции печени в эксперименте. Патол. физиол. и эксперим. терапия. 2002; 4: 11–13. PMID: 12638422

13. Савилов П.Н. Гипероксический саногенез при резекции печени. Таврический мед.биол. вестник. 2012; 15 (3, ч.2): 374.

14. Кричевская А.А., Лукаш А.И., Броновицкая З.Г. Биохимические механизмы кислородной интоксикации. РостовнаДону: РГУ; 1980: 116.

15. Stiffler D.F., Hawk C.T., Fowler B.C. Renal excretion of urea in the salamander, Ambystoma tigrinum. J. Exp. Zool. 1980; 213 (2): 205–212. http://dx.doi.org/10.1002/jez.1402130207. PMID: 7462970

16. Чернышева М.Д., Малыгин А.М., Фель В.Я. Индукция аргиназной активности в спленоцитах мышей С3НА при частичной гепатэктомии Цитология. 1985; 27 (2): 209– 212. PMID: 3992661

17. Леонов А.Н. Гипероксия. Адаптация. Саногенез. Воронеж: ВГМА; 2006: 190.

18. Adcock M.W., O’Brien W.E. Molecular cloning of cDNA for rat and human carbamyl phosphate synthetaseI. J. Biol. Chem. 1984; 259 (21): 13471–13476. PMID: 6208196

19. Молчанов Д.В. Почки при гипероксии. М.: Бином; 2015: 160.

20. Савилов П.Н. Динамика азотистых метаболитов в ткани щитовидной железы при резекции печени. Галицький лiкарський вiсник —IваноФранкiвськ. 2013; 20 (2): 100– 102.


Для цитирования:


Cавилов П.Н., Алейникова Т.Л. КИНЕТИКА МОЧЕВИНЫ В ОРГАНИЗМЕ ПОСЛЕ РЕЗЕКЦИИ ПЕЧЕНИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ. Общая реаниматология. 2016;12(5):23-31. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-23-31

For citation:


Savilov P.N., Aleinikova T.L. The Kinetics of Urea in the Body after Liver Resection in the Experiment. General Reanimatology. 2016;12(5):23-31. (In Russ.) https://doi.org/10.15360/1813-9779-2016-5-23-31

Просмотров: 243


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1813-9779 (Print)
ISSN 2411-7110 (Online)