Preview

Общая реаниматология

Расширенный поиск

Предупреждение нарушений барьерной функции кишечника при острой массивной кровопотере (экспериментальное исследование)

https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-4-76-87

Полный текст:

Аннотация

Цель исследования: изучить влияние инфузионной коррекции гиповолемии малатсодержащими препаратами и последующей глутаминобогащенной нутритивной поддержки на поддержание барьерной функции кишечника и гипергидратацию у животных с острой массивной кровопотерей.

Материалы и методы. У 100 крыс после острой кровопотери (30% ОЦК) провели бактериальные «посевы» крови, исследование липополисахарида и пресепсина в крови хвостовой и воротной вен, структуры толстой кишки и веса животных через 1 час, сутки и 3 суток после восполнения гиповолемии. В 1-й серии применяли раствор Рингера и стандартную питательная смесь, во 2-й серии — малатсодержащий раствор и стандартную питательная смесь, в 3-й серии — малатсодержащий рас-твор и глутаминобогащенную питательную смесь.

Результаты. У интактных животных в крови воротной вены значения эндотоксина составляли 17,8Ѓ}3,9 пг/мл, пресепсина — 405,6Ѓ}80,1 пг/мл. «Посевы» крови из хвостовой и воротной вен на всех эта-пах показали отсутствие бактериального роста, что подтверждает сохранение кишечного барьера для живых микроорганизмов. Через 1 час после восполнения гиповолемии и реинфузии крови отмечали многократный рост эндотоксина в крови воротной и хвостовой вены с достоверным увеличением уровня пресепсина. Через сутки после кровопотери во 2-й и 3-й сериях животных значения эндотоксина, пресепсина, отека слизистой оболочки и подслизистого пространства толстой кишки были меньше, чем в 1-й серии. Через 3 суток определили преимущества глутаминсодержащего питания в 3-й серии эксперимента: сдерживание нарастания эндотоксина и пресепсина в крови воротной и хвостовой вены, интерстициального отека толстой кишки, увеличения веса животного.

Заключение. Применение малатсодержащих инфузионных препаратов и глутаминобогащенного питания после острой массивной кровопотери способствует снижению выработки пресепсина в органах желудочно-кишечного тракта, транслокации эндотоксина в воротную вену и системный кровоток, уменьшению степени выраженности отека слизистой оболочки, подслизистого пространства толстой кишки и нарастания веса животных.

Об авторах

А. Ю. Яковлев
Нижегородская областная клиническая больница им. Н. А. Семашко
Россия

Алексей Юрьевич Яковлев

603126, г. Нижний Новгород, ул. Родионова, д. 190

 



Г. А. Бояринов
Приволжский исследовательский медицинский университет
Россия

603005, г. Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д.10/1



Д. В. Рябиков
Городская клиническая больница № 13
Россия

603018, г. Нижний Новгород, ул. Патриотов, д. 51



М. А. Рябикова
Городская клиническая больница № 13
Россия

603018, г. Нижний Новгород, ул. Патриотов, д. 51



Д. М. Протасов
Нижегородская областная клиническая больница им. Н. А. Семашко
Россия

603126, г. Нижний Новгород, ул. Родионова, д. 190



И. В. Мухина
Приволжский исследовательский медицинский университет
Россия

603005, г. Нижний Новгород, пл. Минина и Пожарского, д.10/1



Список литературы

1. Петрова М.В., Бутров А.В., Гречко А.В., Степанова Н.В., Накаде М., Сторчай М.Н., Мохан Р., Махмутова Г.Р. Влияние инфузии на развитие послеоперационной кишечной недостаточности. Общая реаниматология. 2018; 14 (1): 50–57. DOI: 10.15360/18139779-2018-1-50-57

2. Бобринская И.Г., Мороз В.В., Яковенко В.Н., Кудряков О.Н., Спиридонова Е.А., Солдатова В.Ю. Cелективная полиграфия и резонансная стимуляция желудочнокишечного тракта в раннем послеоперационном периоде при перитоните. Общая реаниматология. 2016; 12 (2): 90–99. DOI: 10.15360/1813-9779-2016-2-90-99

3. Lang R., Patel D., Morris J.J., Rutschman R.L., Murray P.J. Shaping gene expression in activated and resting primary macrophages by IL-10. J. Immunol. 2002; 169: 2253–2263. DOI: 10.4049/jimmunol.169.5.2253

4. Martinez F.O., Gordon S., Locati М., Mantovani A. Transcriptional Profiling of the Human Monocyte-to-Macrophage Differentiation and Polarization: New Molecules and Patterns of Gene Expression. J. Immunol. 2006; 177: 7303–7311 DOI: 10.4049/jimmunol.177.10.7303

5. Heine H., Rietschel E.T., Ulmer A. The biology of endotoxin. J. Mol Biotechnol. 2001; Nov; 19 (3): 279–296. DOI: 10.1385/MB:19:3:279. PMID: 11721624

6. Balzan S., de Almeida Quadros C., de Cleva R., Zilberstein B., Cecconello I., Bacterial translocation: overview of mechanisms and clinical impact. J Gastroenterol. Hepatol. 2007; Apr; 22 (4): 464–471. DOI: 10.1111/j.1440-1746.2007.04933. PMID: 17376034

7. Черневская Е.А., Белобородова Н.В. Микробиота кишечника при критических состояниях (обзор). Общая реаниматология. 2018; 14 (5): 96–119. DOI: 10.15360/1813-9779-2018-5-96-119

8. Fulop A., Turoczi Z., Garbaidsz D., Harsdnyi L., Szijdrio A. Experimental models of hemorrhagic shock: a review. Eur. Surg. Res. 2013; 50 (2): 57–70 DOI: 10.1159/000348808

9. Lomas-Niera J.L., Perl M, Chung CS, Ayala A. Shock and hemorrhage: an overview of animal models. Shock. 2005; 24 (1): 33–39 PMID: 16374370

10. Lundsgaard-Hansen P. Component therapy of surgical hemorrhage: red cell concentrates, colloids and crystalloids. Bibl Haematol. 1980; (46): 147–169. PMID: 7378036.

11. Medby C. Is There a Place for Crystalloids and Colloids in Remote Damage Control Resuscitation? Shock. 2014; 41: 47–50. DOI: 10.1097/shk.0000000000000117

12. Magnotti L.J., Upperman J.S., Xu D.Z., Lu Q., Deitch E.A. Gut-derived mesenteric lymph but not portal blood increases endothelial cell permeability and promotes lung injury after hemorrhagic shock. Ann. Surg. 1998; Oct; 228 (4): 518–527. PMID: 9790341

13. Wang Z.T., Yao Y.M., Xiao G.X., Sheng Z.Y. Improvement of bifidobacterial supplement on the barrier function of intestinal mucosa and microbe flora induced by thermal injury in rats. Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2003; Mar; 15 (3): 154–158. PMID: 12831619

14. Garcia-Hernandez V., Quiros M., Nusrat A. Intestinal epithelial claudins: expression and regulation in homeostasis and inflammation. Ann. NY Acad. Sci. 2017; Jun; 1397 (1): 66–79. DOI: :10.1111/nyas.13360. PMID: 28493289

15. Baxevanos N., Giamarellos-Bourboulis E.J., Pistiki A., Korre M., Droggiti D.I., Tsaganos T. Bacterial translocation induces proinflammatory responses and is associated with early death in experimental severe injury. J. Surg. Res. 2013; Dec; 185 (2): 844–850 DOI: 10.1016/j.jss.2013.07.026. PMID: 23953792

16. Zhang Y., Zhang J., Xu T., Wu W., Huang F.F., Yu W.Q., Zhang S.Y., Liang T.B. Allicin ameliorates intraintestinal bacterial translocation after trauma/hemorrhagic shock in rats: The role of mesenteric lymph node dendritic cell. Surgery. 2017 Feb; 161 (2): 546–555. DOI: 10.1016/j.surg.2016.08.029.

17. Яковлев А.Ю., Кичин В.В., Никольский В.О., Калентьев Г.В., Рябиков Д.В., Рябикова М.А., Протасов Д.М., Галанина Т.А., Сморкалов А.Ю., Евдокимова О.С. Эффективность применения стерофундина изотонического после острой массивной кровопотери в эксперименте. Общая реаниматология. 2013; 9 (3): 24. DOI: 10.15360/1813-9779-2013-3-24

18. Kojima M., Gimenes-Junior J.A., Chan T.W., Eliceiri B.P., Baird A., Costantini T.W., Coimbra R. Exosomes in postshock mesenteric lymph are key mediators of acute lung injury triggering the macrophage activation via Toll-like receptor 4. FASEB J. 2018; Jan; 32 (1): 97–110. DOI: 10.1096/fj.201700488R. PMID: 28855278

19. Kojima M., Gimenes-Junior J.A., Langness S., Morishita K., LavoieGagne O., Eliceiri B., Costantini T.W., Coimbra R. Exosomes, not protein or lipids, in mesenteric lymph activate inflammation: Unlocking the mystery of post-shock multiple organ failure. J. Trauma Acute Care Surg. 2017; Jan; 82 (1): 42–50. DOI: 10.1097/TA.0000000000001296. PMID: 27779585

20. Renner L., Kahlert S., Tesch T., Bannert E., Frahm J., Barta-Boszormenyi A., Kluess J., Kersten S., Schonfeld P., Rothkotter H.J., Danicke S. Chronic DON exposure and acute LPS challenge: effects on porcine liver morphology and function. Mycotoxin Res. 2017; Aug; 33 (3): 207–218. DOI: 10.1007/s12550-017-0279-9. PMID: 28474303

21. Depboylu B., Giris M., Olgac V., Dodru-Abbasodlu S., Uysal M. Response of liver to lipopolysaccharide treatment in male and female rats. Exp. Toxicol. Pathol. 2013; 65: 645–650. DOI: 10.1016/j.etp.2012.07.004. PMID: 22884257

22. Zhou G., Dada L.A., Wu M., Kelly A., Trejo H., Zhou K., Varga J., Sznajder J.I. Hypoxia-induced alveolar epithelial-mesenchymal transition requires mitochondrial ROS and hypoxia-inducible factor 1. Am. J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol. 2009; 297 (6): 1120–1130. DOI: 10.1152/ajplung.00007.2009.

23. Kaistha A., Levine J. Inflammatory bowel disease: the classic gastrointestinal autoimmune disease. Curr. Probl. Pediatr. Adolesc. Health Care. 2014; Dec; 44 (11): 328–334. DOI: 10.1016/j.cppeds.2014.10.003. PMID: 25499459

24. Мороз В.В., Рыжков И.А. Острая кровопотеря: регионарный кровоток и микроциркуляция (Обзор, Часть I). Общая реаниматология. 2016; 12 (2): 66–89. DOI: 10.15360/1813-9779-2016-2-56-65

25. Мороз В.В., Рыжков И.А. Острая кровопотеря: регионарный кровоток и микроциркуляция (обзор, часть II). Общая реаниматология. 2016; 12 (5): 65–94. DOI: 10.15360/1813-97792016-5-65-94

26. Zhao J., Yan C., Xu L., Yan K., Feng B., Zhao M., Niu G., Wu M., Chen C., Zhu H. The effect of pPolyHb on hemodynamic stability and mesenteric microcirculation in a rat model of hemorrhagic shock. Artif Cells Nanomed Biotechnol. 2017 Jun; 45 (4): 677–685. DOI: 10.1080/21691401.2017.1282869

27. Torres Filho I. Hemorrhagic Shock and the Microvasculature. Compr Physiol. 2017 Dec 12; 8 (1): 61–101. DOI: 10.1002/cphy.c170006. PMID: 29357125

28. Balogh Z., Wolfard A., Szalay L., Orosz E., Simonka J.A., Boros M. Dalteparin sodium treatment during resuscitation inhibits hemorrhagic shock induced leukocyte rolling and adhesion in the mesenteric microcirculation. J. Trauma. 2002; 52 (6): 1062–1069. DOI: 10.1097/0000537320020600000007. PMID: 12045631

29. Arai Y., Mizugishi K., Nonomura K., Naitoh K., Takaori-Kondo A., Yamashita K. Phagocytosis by human monocytesis required for the secretion of presepsin. J. Infect. Chemother. 2015; Aug; 21 (8): 564–569 DOI: 10.1016/j.jiac.2015.04.011.

30. Chenevier-Gobeaux C., Bardet V., Poupet H., Poyart C., Borderie D., Claessens Y. Presepsin (sCD14-ST) secretion and kinetics by peripheral blood mononuclear cells and monocytic THP-1 cell line. Clin. Chim. Acta. 2016; 74 (1): 93–97 DOI: 10.1684/abc.2015.1112

31. Bamba Y., Moro H., Aoki N., Koizumi T., Ohshima Y., Watanabe S. Increased presepsin levels are associated with the severity of fungal bloodstream infections. PLoS ONE 2018; Oct. 31, 13 (10): e0206089. DOI: 10.1371/journal.pone.0206089

32. Stavrou G., Arvanitidis K., Filidou E., Fotiadis K., Grosomanidis V., Ioannidis A., Tsaousi G., Michalopoulos A., Kolios G., Kotzampassi K. Combined Enteral and Parenteral Glutamine Supplementation in Endotoxaemic Swine: Effects on Portal and Systemic Circulation Levels. Med. Princ. Pract. 2018; Sep 5. DOI: 10.1159/000493481. PMID: 30184534

33. Fan J., Wu J., Wu L.D., Li G.P., Xiong M., Chen X., Meng Q.Y. Effect ofparenteral glutamine supplementation combined with enteral nutrition on Hsp90 expression and lymphoid organ apoptosis in severely burned rats. Burns. 2016; Nov; 42 (7): 1494–1506. DOI: 10.1016/j.burns.2016.02.009. Epub 2016 Sep 6. PMID: 27613477

34. Meng J., Wang Q., Liu K., Yang S., Fan X., Liu B., He C., Wu X. Systemic and Splanchnic Lipopolysaccharide and Endothelin-1 Plasma Levels in Liver Cirrhosis before and after Transjugular Intrahepatic Portosystemic Shunt. Gastroenterol. Res. Pract. 2016; 2016: 8341030. DOI: 10.1155/2016/8341030. Epub 2016 Jan 31. PMID: 26941788

35. Wu C.Y., Yeh Y.C., Chien C.T., Chao A., Sun W.Z., Cheng Y.J. Laser speckle contrast imaging forassessing microcirculatory changes in multiple splanchnic organs and the gracilismuscle during hemorrhagic shock and fluid resuscitation. Microvasc. Res. 2015; 101: 55–61. DOI: 10.1016/j.mvr.2015.06.003. PMID: 26093177

36. Gao F., Fu X, Qian M, Zhang Y, Li G, Hu J. Changes of small intestinal villi microcirculation in sidestream dark-field imaging with different target blood pressure in rabbits during endotoxin shock. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2017 Apr; 29 (4): 311–315. doi: 10.3760/cma.j.issn.2095-4352.2017.04.005.

37. Schulz K., Sommer O., Jargon D., Utzolino S., Clement H.W., Strate T., von Dobschuetz E. Cytokine and radical inhibition in septic intestinal barrier failure. J. Surg. Res. 2015; Feb; 193 (2): 831–840. DOI: 10.1016/j.jss.2014.08.056. PMID: 25277359

38. Liu P.S., Ho P.C. Determining Macrophage Polarization upon Metabolic Perturbation. Methods Mol. Biol. 2019; 1862: 173–186. DOI: 10.1007/978-1-4939-8769-6_13. PMID: 30315468

39. McNeil C.J., Hoskin S.O., Bremner D.M., Holtrop G., Lobley G.E. Whole-body and splanchnic amino acid metabolism in sheep during an acute endotoxin challenge. Br. J.Nutr. 2016 Jul; 116 (2): 211–222. DOI: 10.1017/S0007114516001860. PMID: 27189533

40. Kao R.L.C., Xu X., Xenocostas A., Parry N., Mele T., Martin C.M., Rui T. Cpeptide attenuates acute lung inflammation in a murine model of hemorrhagic shock and resuscitation by reducing gut injury. Trauma Acute Care Surg. 2017; Aug; 83 (2): 256–262. DOI: 10.1097/TA.0000000000001539. PMID: 28452895

41. Yi J., Slaughter A., Kotter C.V., Moore E.E., Hauser C.J., Itagaki K., Wohlauer M., Frank D.N., Silliman C., Banerjee A., Peltz E. A «clean case» of systemic injury: 13 mesenteric lymph after hemorrhagic shock elicits a sterile inflammatory response. Shock. 2015; Oct; 44 (4): 336–340. DOI: 10.1097/SHK.0000000000000431

42. Kontouli Z., Staikou C., Iacovidou N., Mamais I., Kouskouni E., Papalois A., Papapanagiotou P., Gulati A., Chalkias A., Xanthos T. Resuscitation with centhaquin and 6% hydroxyethyl starch 130/0.4 improves survival in a swine model of hemorrhagic shock: a randomized experimental study. Eur. J. Trauma Emerg. Surg. 2018; Jul 13. DOI: 10.1007/s00068-018-0980-1 PMID: 30006694

43. Busuito C.M., Ledgerwood A.M., Lucas C.E. Colloid with high fresh frozen plasma/red blood cell resuscitation does not reduce postoperative fluid needs. J. Trauma Acute Care Surg. 2014 Apr.; 76 (4): 1008–1012. DOI: 10.1097/TA.0000000000000183 PMID: 24662864


Для цитирования:


Яковлев А.Ю., Бояринов Г.А., Рябиков Д.В., Рябикова М.А., Протасов Д.М., Мухина И.В. Предупреждение нарушений барьерной функции кишечника при острой массивной кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2019;15(4):76-87. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-4-76-87

For citation:


Yakovlev A.Y., Boyarinov G.A., Ryabikov D.V., Ryabikova M.A., Protasov D.M., Mukhina I.V. Prevention of Gut Barrier Dysfunction During Acute Massive Blood Loss (Experimental Study). General Reanimatology. 2019;15(4):76-87. (In Russ.) https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-4-76-87

Просмотров: 142


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1813-9779 (Print)
ISSN 2411-7110 (Online)