Preview

Общая реаниматология

Расширенный поиск

Влияние гемодилюции in vitro и in vivo на систему гемостаза (экспериментальное исследование)

https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-4-1-0

Полный текст:

Аннотация

Цель исследования - определить в эксперименте, как гемодилюция раствором стерофундин/гелофузин (С/Г) в соотношении 2:1 влияет in vitro и in vivo на параметры системы гемостаза.

Материал и методы. Эксперименты провели на 75 крысах-самцах линии Wistar массой 270-380 г, наркотизированных тилетамин/золазепамом (40 мг/кг внутримышечно) + ксилазином (10 мг/кг внутримышечно). Животных разделили случайным образом на 4 группы: группа I – разведение образцов крови из сонной артерии С/Г in vitro на 25% (n=12), группа II – разведение крови in vitro на 37,5% (n=11), группа III – разведение in vivo на 25% (n=10), группа IV – контрольная (n=42) – без разведения. На первом этапе исследования сравнивали группы разведения in vitro с контрольной группой и между собой, на втором этапе – группу разведения in vivo сравнивали с контрольной группой. Для оценки влияния гемодилюции исследовали параметры низкочастотной пьезотромбоэластографии (НПТЭГ), тестов по оценке свертывания крови и общего анализа крови.

Результаты. При гемодилюции на 25% in vitro и in vivo С/Г в соотношении 2:1 изучаемые параметры системы гемостаза не выходили за рамки референсных границ, но in vitro отмечали тенденцию к усилению интенсивности ферментативного этапа свертывания и значимое усиление полимеризации сгустка по причине относительной недостаточности антикоагулянтов.

Разведение крови in vitro на 37,5% значимо сокращало в крови количество фибриногена и тромбоцитов, ингибировало интенсивность протеолитического этапа свертывания, уменьшало плотность тромба в точке желирования T3, на 5-й минуте после ее достижения и максимальную амплитуду (МА) кривой НПТЭГ, а также значимо уменьшало антикоагулянтную активность крови. Выявленные изменения параметров системы гемостаза значительно выходили за границы референсных значений. Показано, что при разведении in vivo на 25% значения показателя плотности тромба отрицательно коррелировали с интенсивностью контактной коагуляции (величина отрицательная), а при разведении in vitro на 37,5% эти значения положительно коррелировали также и с количеством тромбоцитов и содержанием фибриногена.

Заключение. Гемодилюция раствором С/Г в соотношении 2:1 на 25% по объему минимально изменяет параметры гемостаза in vitro и является относительно безопасной для системы гемостаза.

Об авторах

А. А. Кинзерский
Омский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12



В. Т. Долгих
НИИ общей реаниматологии им. В. А. Неговского ФНКЦ РР
Россия

10703, г. Москва, ул. Петровка, д. 25, стр. 2



М. С. Коржук
Омский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12



Д. А. Кинзерская
Омский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12



С. В. Романенко
Омский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12



Список литературы

1. Martini W.Z. Coagulation complications following trauma. Mil. Med. Res. 2016; 3: 35. DOI: 10.1186/s40779-016-0105-2

2. Baraich A.I., Sychev A.A., Savin I.A., Polunin A.A., Oshirov A.V., Potapov A.A. Hemostasis disturbances in patients in the acute period of isolated traumatic brain injure (review). Obshchaya Reanimatologiya. 2018; 14(5): 85-95. DOI: 10.15360/1813-0779-2018-5-85-95 [In Russ]

3. Spahn D. R., Bouillon B., Cerny V., Duranteau J., Filipescu D., Hunt B. J., Komadina R., Maegele M., Nardi G., Riddez L., Samama C-M., Vincent J-L., Rossaint R. The European guideline on management of major bleeding and coagulopathy following trauma: fifth edition. Critical Care. 2019; 23: 98. DOI: org/10.1186/s13054-019-2347-3.

4. Mullier F., Lessire S., De Schoutheete J-C., Chatelain B., Deneys V., Mathieux V., Hachimi Idrissi S., Dogne J-M., Watelet J-B., Gourdin M., Dincq A-S. Facing coagulation disorders after acute trauma. B-ENT. 2016; 26(1): 67-85.

5. Baraich A.I., Sychev A.A., Savin I.A., Polunin A.A., Oshirov A.V., Potapov A.A. Coagulopathy in the acute phase of traumatic brain injure. Obshchaya Reanimatologiya. 2020; 16(1): 27-34 14(5): 85-95. DOI: 10.16360/1813-9779-2020-1-27-34 [In Russ]

6. Kugaevskaya E.V., Gureeva T.A., Timoshenko O.S., Solovyeva N.I. Urukinase-type plasminogenactivator system in norm and life-threatening processes (review). Obshchaya Reanimatologiya. 2018; 14(6): 61-79. DOI: 10.15360/1813-0779-2018-6-61-79 [In Russ]

7. Hampton D. A., Fabricant L. J., Differding J., Diggs B., Underwood S., De La Cruz D., Holcomb J. B., Brasel K. J., Cohen M. J., Fox E. E., Alarcon L. H., Rahbar M. H., Phelan H. A., Bulger E. M., Muskat P., Myers J. G., del Junco D. J., Wade C. E., Cotton B.A., Schreiber M. A. Prehospital intravenous fluid is associated with increased survival in trauma patients. J Trauma Acute Care Surg. 2013; 75(1): 9-15. DOI: 10.1097/TA.0b013e318290cd52

8. Boyd C.J., Claus M.A., Raisis A.L., Hosgood G., Sharp C.R., Smart L. Hypocoagulability and platelet dysfunction are exacerbated by synthetic colloids in a canine hemorrhagic shock model. Front Vet Sci. 2018; 5: 279-290. DOI: 10.3389/fvets.2018.0027

9. Sevcikova S., Vymazal T., Durila M. Effect of balanced crystalloid, gelatin and hydroxyethyl starch on coagulation detected by rotational thromboelastometry in vitro. Clin Lab. 2017; 63(10): 1691-1700. DOI: 10.7754/Clin.Lab.2017.170505

10. Kozek-Langenecker S.A. Fluids and coagulation. Curr Opin Crit Care. 2015; 21(4); 285-291. DOI: 10.1097/mcc.0000000000000219

11. Wu R., Peng L-G., Zhao H-M. Diverse coagulopathies in a rabbit model with different abdominal injuries. World J. Emerg. Med. 2017; 8(2): 141-147. DOI: 10.5847/wjem.j.1920-8642.2017.02.011

12. Dyer M., Haldeman S., Gutierrez A., Kohut L., Gupta A.S., Neal M.D. Uncontrolled hemorrhagic shock modeled via liver laceration in mice with real time hemodynamic monitoring. J Vis Exp. 2017; 123: 55554. DOI: 10.3791/55554

13. Wang H., Cao H., Zhang X., Ge L., Bie L. The effect of hypertonic saline and mannitol on coagulation in moderate traumatic brain injury patients. Am J Emerg Med. 2017; 35(10): 1404-1407. DOI: 10.1016/j.ajem.2017.04.020

14. Ponschab M., Schöchl H., Keibl C., Fischer H., Redl H., Schlimp C.J. Preferential effects of low volume versus high volume replacement with crystalloid fluid in a hemorrhagic shock model in pigs. BMC Anesthesiol. 2015; 15: 133. DOI: 10.1186/s12871-015-0114-9

15. Solovyev M.A., Tyutrin I.I., Udut V.V., Klimenkova V.F. Experience in the diagnosis and monitoring of critical hemostasis disorders. Med.-biol. i sots.-psikhol. probl. bezopasnosti v chrezv. situatsiyakh. 2013; 4: 55–60. DOI.org/10.25016/2541-7487-2013-0-4-55-60 [In Russ]

16. Udut V.V., Tyutrin I.I., Kotlovskaya L.Yu., Solovyev M.A., Zhukov E.L., Lastovetskiy A.G., Borodulina E.V., Kotlovsky M.Yu. Technology of low-frequency piezothromboelastography in the assessment of hemostatic potential. Vestnik novikh meditsinskikh tekhnologiy. 2016; 4 DOI: 10.12737/22220 [In Russ]

17. Kinzersky A.A., Dolgikh V.T., Korzhuk M.S. Method for obtaining reference values of low-frequency piezothromboelastography in male rats of the Wistar strain. Sibirsky meditsinsky zhurnal (Irkutsk). 2016; 142(3): 25-28.

18. Kinzersky A.A., Dolgikh V.T., Korzhuk M.S. Normal values of low-frequency piezotromboelastography of male Wistar rats obtained under xylazine + tiletamine-zolazepam anesthesia during blood sampling from the carotid artery. Certificate of state registration of the database No.2016620346. Bull. 2016. 4 [In Russ]

19. Kinzersky A.A., Petrova Yu.A., Korzhuk M.S., Dolgikh V.T. Normal values of the general, biochemical analysis of blood and coagulogram of male rats of the Wistar line. Certificate of state registration of the database No. 2017620486. Bull. 2017; 5 [In Russ]

20. Lipatov V.A., Severinov D.A., Kryukov A.A., Saakyan A.R. Ethical and legal aspects of experimental biomedical research in vivo. Part II. Rossiysy medico-biologichesky vestnik im. I.P. Pavlova. 2019; 27(2): 245-257. DOI:10.23888/PAVLOVJ2019272245-257 [in Russ]

21. Kinzersky A.A., Dolgikh V.T., Korzhuk M.S. Temporal and structural indicators of thrombogenesis dynamics of low-frequency piezotromboelastography of male Wistar rats obtained under xylazine + tiletamine-zolazepam anesthesia during blood sampling from the carotid artery. Certificate of state registration of the database No. 201662071. Bull. 2016; 6 [In Russ]

22. Mastitsky S.E., Shitikov V.K. Statistical analysis and visualization of data using R. Khaydelberg-London-Toliyatti. 2014: 401 [In Russ]

23. Haas T., Mauch J., Weiss M., Schmugge M. Management of dilutional coagulopathy during pediatric major surgery. Transfus Med Hemother. 2012; 39(2): 114–119. DOI: 10.1159/000337245

24. Dolgov V.V., Svirin P.V. Laboratory diagnostics of hemostatic disorders. M.- Tver: Triad Publishing Company LLC; 2005: 227. ISBN 5-94789-114-X

25. Ruttmann T.G., Lemmens H.J.M., Malott K.A., Brock-Utne J.G. The haemodilution enhanced onset of coagulation as measured by the thrombelastogram is transient. Eur J Anaesthesiol. 2006; 23 (7): 574-579. DOI: 10.1017/S0265021506000238

26. Veigas P.V., Callum J., Rizoli S., Nascimento B., Luz L.T. A systematic review on the rotational thrombelastometry (ROTEM®) values for the diagnosis of coagulopathy, prediction and guidance of blood transfusion and prediction of mortality in trauma patients. Scand. J. Trauma Resusc. Emerg. Med. 2016; 24(1): 114. DOI: 10.1186/s13049-016-0308-2

27. Morris B.R., Laforcade A, Lee J., Palmisano J., Meola D., Rozanski E. Effects of in vitro hemodilution with crystalloids, colloids, and plasma on canine whole blood coagulation as determined by kaolin‐activated thromboelastography. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2016; 26(1): 58-63. DOI: 10.1111/vec.12345

28. Schäfer N., Driessen A., Bauerfeind U., Fröhlich M., Ofir J., Stürmer E. K., Maegele M. In vitro effects of different sources of fibrinogen supplementation on clot initiation and stability in a model of dilutional coagulopathy. Transfus Med. 2016; 26(5): 373-380. DOI.org/10.1111/tme.12333

29. Sevcikova S., Durila M., Vymazal T. Rotational thromboelastometry assessment of ballanced crystalloid, hydroxyethyl starch and gelatin effects on coagulation: a randomized trial. Rev Bras Anestesiol. 2019; 69(4): 383-389. DOI: 10.1016/j.bjan.2019.03.009

30. Kam P., Varanasi S., Yang K.X. The effects of haemodilution with succinylated gelatin solution on coagulation in vitro as assessed by thromboelastometry and impedance (multiple electrode) aggregometry. Anaesth Intensive Care. 2018; 46(3): 272-277. DOI: 10.1177/0310057X1804600304


Для цитирования:


Кинзерский А.А., Долгих В.Т., Коржук М.С., Кинзерская Д.А., Романенко С.В. Влияние гемодилюции in vitro и in vivo на систему гемостаза (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 0;. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-4-1-0

For citation:


Kinzersky A.A., Dolgikh V.T., Korzhuk M.S., Kinzerskaya D.A., Romanenko S.V. Effect of Hemodilution in vitro and in vivo on the Hemostatic System (experimental study). General Reanimatology. 0;. (In Russ.) https://doi.org/10.15360/1813-9779-2021-4-1-0

Просмотров: 23


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1813-9779 (Print)
ISSN 2411-7110 (Online)