Методы экстракорпоральной гемокоррекции при сепсисе (обзор)

Сепсис и септический шок остаются важной проблемой в медицине критических состояний, поскольку являются одной из наиболее частых причин смерти в отделении интенсивной терапии. В настоящее время такие методы экстракорпоральной гемокоррекции (ЭГК), как гемодиафильтрация, высокообъемная гемофильтрация, гемофильтрация через high cut-off мембрану занимают особое место в ряду опций по лечению тяжелейших системных заболеваний и патологических процессов, в частности, сепсиса.

Цель обзора — показать возможности и перспективы применения различных методов экстракорпоральной гемокоррекции, как использующихся в настоящее время, так и находящихся в стадии разработки с учетом патофизиологических особенностей сепсиса.

Отбор 82 источников проводили по принципу сочетания клинических и экспериментальных данных из литературы последних пяти лет и более ранних, сохранивших актуальность для медицинской практики.

В обзоре представили современные методы экстракорпоральной гемокоррекции (ЭГК) у пациентов с сепсисом. Описали клиническую патофизиологию сепсиса в аспекте рассматриваемых методов лечения: эндотоксинемию, фазу «цитокинового шторма». Рассмотрели как используемые в настоящее время методы ЭГК: гемодиафильтрацию, высокообъемную гемофильтрацию, гемофильтрацию через high cut-off мембрану и другие, так и перспективные технологии: мембрану oXiris, а также устройство поддержки почки, экстракорпоральную систему поддержки иммунитета, модуль ингибирования лейкоцитов, искусственную селезенку, которые все еще находятся в стадии разработки.

Заключение. В настоящее время методы ЭКГ все чаще используются не только для поддержки почечных функций, но и в качестве патогенетической терапии для полиорганной поддержки и иммуномодуляции посредством снижения уровня циркулирующих медиаторов воспаления. Изучение новых вариантов ЭГК в качестве метода патогенетического лечения у пациентов с сепсисом представляется интересным и перспективным.

1. Экстракорпоральная гемокоррекция: терминология, языковые соответствия. «Национальное общество специалистов в области гемафереза и экстракорпоральной гемокоррекции». М., СПб.; 2015, 2019. Терминология (hemapheres.ru)

2. Monard C., Rimmelé T., Ronco C. Extracorporeal blood purification therapies for sepsis. Blood Purif. 2019; 47 Suppl 3: 1-14. DOI: 10.1159/000499520. PMID: 30974444.

3. Anthis A.H.C., Matter M.T., Keevend K., Gerken L.R.H., Scheibler S., Doswald S., Gogos A. et al. Tailoring the colloidal stability, magnetic separability, and cytocompatibility of high-capacity magnetic anion exchangers. ACS Appl Mater Interfaces. 2019; 11 (51): 48341-48351. DOI: 10.1021/acsami.9b16619. PMID: 31747521.

4. Economou C.J.P, Ordonez J, Wallis S.C., Richards B, McWhinney B., Lipman J., Roberts J.A. Ticarcillin and piperacillin adsorption on to polyethersulfone haemodiafilter membranes in an ex-vivo circuit. Int J Antimicrob Agents. 2020; 56 (3): 106058. DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2020.106058. PMID: 32590056.

5. Vincent J.L., Sakr Y., Sprung C.L., Ranieri V.M., Reinhart K., Gerlach H., Moreno R. et al. Sepsis Occurrence in Acutely Ill Patients Investigators. Sepsis in European intensive care units: results of the SOAP study. Crit Care Med. 2006; 34 (2): 344-353. DOI: 10.1097/01.ccm.0000194725.48928.3a. PMID: 16424713.

6. Beale R., Reinhart K., Brunkhorst F.M., Dobb G., Levy M., Martin G., Martin C. et al., PROGRESS Advisory Board. Promoting Global Research Excellence in Severe Sepsis (PROGRESS): lessons from an international sepsis registry. Infection. 2009; 37 (3): 222-232. DOI: 10.1007/s15010-008-8203-z. PMID: 19404580.

7. Shankar-Hari M., Phillips G.S., Levy M.L., Seymour C.W., Liu V.X., Deutschman C.S., Angus et al., Sepsis Definitions Task Force. Developing a new definition and assessing new clinical criteria for septic shock: for the third international consensus definitions for sepsis and septic shock (Sepsis-3). JAMA. 2016; 315 (8): 775-787. DOI: 10.1001/jama.2016.0289. PMID: 26903336.

8. Neviere R., Parsons P.E. (Section Editor), Finlay G. (Deputy Editor). Sepsis syndromes in adults: epidemiology, definitions, clinical presentation, diagnosis, and prognosis. In: UpToDate. https: //www.uptodate.com/contents/sepsis-syndromes-in-adults-epidemiology-definitions-clinical-presentation-diagnosis-and-prognosis. (Accessed on Jule 04, 2022).

9. Hellman T, Uusalo P, Järvisalo M.J. Renal replacement techniques in septic shock. Int J Mol Sci. 2021; 22 (19): 10238. DOI: 10.3390/ijms221910238. PMID: 34638575.

10. Wiersinga W.J., Leopold S.J., Cranendonk D.R., van der Poll T. Host innate immune responses to sepsis. Virulence. 2014; 5 (1): 36-44. DOI: 10.4161/viru.25436. PMID: 23774844.

11. Moriyama K, Nishida O. Targeting cytokines, pathogen-associated molecular patterns, and damage-associated molecular patterns in sepsis via blood purification. Int J Mol Sci. 2021; 22 (16): 8882. DOI: 10.3390/ijms22168882. PMID: 34445610.

12. Costanzo M.R., Guglin M.E., Saltzberg M.T., Jessup M.L., Bart B.A., Teerlink J.R., Jaski B.E. et al., UNLOAD Trial Investigators. Ultrafiltration versus intravenous diuretics for patients hospitalized for acute decompensated heart failure. J Am Coll Cardiol. 2007; 49 (6): 675-683. DOI: 10.1016/j.jacc.2006.07.073. PMID: 17291932.

13. Ramirez-Sandoval J.C., Gaytan-Arocha J.E., Xolalpa-Chávez P., Mejia-Vilet J.M., Arvizu-Hernandez M., Rivero-Sigarroa E., Torruco-Sotelo C. et al. Prolonged intermittent renal replacement therapy for acute kidney injury in COVID-19 patients with acute respiratory distress syndrome. Blood Purif. 2021; 50 (3): 355-363. DOI: 10.1159/000510996. PMID: 33105136.

14. McKinley T.O., Lei Z., Kalbas Y., White F.A., Shi Z., Wu F., Xu Z.C. et al. Blood purification by nonselective hemoadsorption prevents death after traumatic brain injury and hemorrhagic shock in rats. J Trauma Acute Care Surg. 2018; 85 (6): 1063-1071. DOI: 10.1097/TA.0000000000002069. PMID: 30211852.

15. Tandon R., Froghi S. Artificial liver support systems. J Gastroenterol Hepatol. 2021; 36 (5): 1164-1179. DOI: 10.1111/jgh.15255. PMID: 32918840.

16. Ronco C., Tetta G., Mariano F., Wratten M.L., Bonello M., Bordoni V., Cardona X. et al. Interpreting the mechanisms of continuous renal replacement therapy in sepsis: the peak concentration hypothesis. Artif Organs. 2003; 27 (9): 792-801. DOI: 10.1046/j.1525-1594.2003.07289.x. PMID: 12940901.

17. Wang C.-T., Ren H.-S., Jiang J.-J., Zhang J.-C., Meng M., Yu J.-B., Chu Y.-F. et al. Study the effects of high-volume hemofiltration and fluid resuscitation on removing blood lactic acid and pro-inflammatory cytokines in patients with refractory septic shock. (in Chinese). Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2009; 21 (7): 421-424. PMID: 19615135.

18. Xu C., Fan K., Xie L., Chen W., Wang L. Evaluation of optimized continuous venovenous hemodiafiltration therapy efficiency in severe burn patients with sepsis. Burns Trauma. 2014; 2 (3): 125-129. DOI: 10.4103/2321-3868.137604. PMID: 27602373.

19. Leypoldt J.K. Solute fluxes in different treatment modalities. Nephrol Dial Transplant. 2000; 15 Suppl 1: 3-9. DOI: 10.1093/oxfordjournals.ndt.a027961. PMID: 10737159.

20. Honore P.M., Joannes-Boyau O. High volume hemofiltration (HVHF) in sepsis: a comprehensive review of rationale, clinical applicability, potential indications and recommendations for future research. Int J Artif Organs. 2004; 27 (12): 1077-1082. DOI: 10.1177/039139880402701211. PMID: 15645619.

21. Honore P.M., Matson J.R. Extracorporeal removal for sepsis: acting at the tissue level-the beginning of a new era for this treatment modality in septic shock. Crit Care Med. 2004; 32 (3): 896-897. DOI: 10.1097/01.ccm.0000115262.31804.46. PMID: 15090989.

22. Di Carlo J.V., Alexander S.R. Hemofiltration for cytokine-driven illnesses: the mediator delivery hypothesis. Int J Artif Organs. 2005; 28 (8): 777-786. DOI: 10.1177/039139880502800803. PMID: 16211527.

23. Olszewski W.L. The lymphatic system in body homeostasis: physiological conditions. Lymphat Res Biol. 2003; 1 (1): 11-21; discussion 21-14. DOI: 10.1089/15396850360495655. PMID: 15624317.

24. Oliver G., Kipnis J., Randolph G.J., Harvey N.L. The Lymphatic vasculature in the 21st century: novel functional roles in homeostasis and disease. Cell. 2020; 182 (2): 270-296. DOI: 10.1016/j.cell.2020.06.039. PMID: 32707093.

25. Ratanarat R., Brendolan A., Ricci Z., Salvatori G., Nalesso F., de Cal M., Cazzavillan S., Petras D., Bonello M., Bordoni V., Cruz D., Techawathanawanna N., Ronco C. Pulse high-volume hemofiltration in critically ill patients: a new approach for patients with septic shock. Semin Dial. 2006; 19 (1): 69-74. DOI: 10.1111/j.1525-139X.2006.00121. PMID: 16423184.

26. Boussekey N., Chiche A., Faure K., Devos P., Guery B., d'Escrivan T., Georges H., Leroy O. A pilot randomized study comparing high and low volume hemofiltration on vasopressor use in septic shock. Intensive Care Med. 2008; 34 (9): 1646-1653. DOI: 10.1007/s00134-008-1127-3. PMID: 18542921.

27. Junhai Z., Beibei C., Jing Y., Li L. Effect of high-volume he-mofiltration in critically ill patients: a systematic review and meta-analysis. Med Sci Monit. 2019; 25: 3964-3975. DOI: 10.12659/MSM.916767. PMID: 31134957.

28. Pizzarelli F., Cantaluppi V., Panichi V., Toccafondi A., Ferro G., Farruggio S., Grossini E. et al. Hephaestus study group. Citrate high volume on-line hemodiafiltration modulates serum Interleukin-6 and Klotho levels: the multicenter randomized controlled study «Hephaestus». J Nephrol. 2021; 34 (5): 1701-1710. DOI: 10.1007/s40620-020-00943-6. PMID: 33559851.

29. Chu L., Li G., Yu Y., Bao X., Wei H., Hu M. Clinical effects of hemoperfusion combined with pulse high-volume hemofiltration on septic shock. Medicine (Baltimore). 2020; 99 (9): e19058. DOI: 10.1097/MD.0000000000019058. PMID: 32118713.

30. Pistolesi V., Morabito S., Di Mario F., Regolisti G., Cantarelli C., Fiaccadori E. A guide to understanding antimicrobial drug dosing in critically ill patients on renal replacement therapy. Antimicrob Agents Chemother. 2019; 63 (8): e00583-19. DOI: 10.1128/AAC.00583-19. PMID: 31109983.

31. Jager N.G.L., Zandvliet A.S., Touw D.J., Penne E.L. Optimization of anti-infective dosing regimens during online haemodiafiltration. Clin Kidney J. 2017; 10 (2): 282-290. DOI: 10.1093/ckj/sfx009. PMID: 28396747.

32. Schiffl H. Intensity of renal replacement therapy and outcomes in critically ill patients with acute kidney injury: critical appraisal of the dosing recommendations. Ther Apher Dial. 2020; 24 (6): 620-627. DOI: 10.1111/1744-9987.13471. PMID: 31904909.

33. Joannes-Boyau O, Honoré P.M, Perez P, Bagshaw S.M., Grand H, Canivet J.-L, Dewitte A. et al. High-volume versus standard-volume haemofiltration for septic shock patients with acute kidney injury (IVOIRE study): a multicentre randomized controlled trial. Intensive Care Med. 2013; 39 (9): 1535-1546. DOI: 10.1007/s00134-013-2967-z. PMID: 23740278.

34. Ricci Z., Romagnoli S., Ronco C. High cut-off membranes in acute kidney injury and continuous renal replacement therapy. Int J Artif Organs. 2017; 40 (12): 657-664. DOI: 10.5301/ijao.5000662. PMID: 29178124.

35. Atan R., Peck L., Visvanathan K., Skinner N., Eastwood G., Bellomo R., Storr M. et al. High cut-off hemofiltration versus standard hemofiltration: effect on plasma cytokines. Int J Artif Organs. 2016; 39 (9): 479-486. DOI: 10.5301/ijao.5000527. PMID: 27834446.

36. Morgera S., Haase M., Kuss T., Vargas-Hein O., Zuckermann-Becker H., Melzer C., Krieg H., Wegner B. et al. Pilot study on the effects of high cutoff hemofiltration on the need for norepinephrine in septic patients with acute renal failure. Crit Care Med. 2006; 34 (8): 2099-2104. DOI: 10.1097/01.CCM.0000229147.50592.F9. PMID: 16763508.

37. Weidhase L., Haussig E., Haussig S., Kaiser T., de Fallois J., Petros S. Middle molecule clearance with high cut-off dialyzer versus high-flux dialyzer using continuous veno-venous hemodialysis with regional citrate anticoagulation: a prospective randomized controlled trial. PLoS One. 2019; 14 (4): e0215823. DOI: 10.1371/journal.pone.0215823. PMID: 31026303.

38. Garbero E., Livigni S., Ferrari F., Finazzi S., Langer M., Malacarne P., Meca M.C.C. et al. High dose coupled plasma filtration and adsorption in septic shock patients. Results of the COMPACT-2: a multicentre, adaptive, randomised clinical trial. Intensive Care Med. 2021; 47 (11): 1303-1311. PMID: 34601619.

39. Simpson B.W., Trent M.S. Pushing the envelope: LPS modifications and their consequences. Nat Rev Microbiol. 2019; 17 (7): 403-416. DOI: 10.1038/s41579-019-0201-x. PMID: 31142822.

40. Jackie J., Lau W.K., Feng H.-T., Li S.F.Y. Detection of endotoxins: from inferring the responses of biological hosts to the direct chemical analysis of lipopolysaccharides. Crit Rev Anal Chem. 2019; 49 (2): 126-137. DOI: 10.1080/10408347.2018.1479958. PMID: 30821472.

41. Mitaka C., Kusaoi M., Kawagoe I., Satoh D. Up-to-date information on polymyxin B-immobilized fiber column direct hemoperfusion for septic shock. Acute Crit Care. 2021; 36 (2): 85-91. DOI: 10.4266/acc.2021.00150. PMID: 33813808.

42. Shoji H., Opal S.M. Therapeutic rationale for endotoxin removal with polymyxin B immobilized fiber column (PMX) for septic shock. Int J Mol Sci. 2021; 22 (4): 2228. DOI: 10.3390/ijms22042228. PMID: 33672437.

43. Ronco C., Klein D.J. Polymyxin B hemoperfusion: a mechanistic perspective. Crit Care. 2014, 18 (3): 309. DOI: 10.1186/cc13912. PMID: 25043934.

44. Chang T., Tu Y.-K., Lee C.-T., Chao A., Huang C.-H., Wang M.-J., Yeh Y.-C.. Effects of polymyxin B hemoperfusion on mortality in patients with severe sepsis and septic shock: a systemic review, meta-analysis update, and disease severity subgroup meta-analysis. Crit Care Med. 2017; 45 (8): e858-64. DOI: 10.1097/CCM.0000000000002362. PMID: 28445237.

45. Хорошилов С.Е., Карпун Н.А., Половников С.Г., Никулин А.В., Кузовлев А.Н. Селективная гемосорбция эндотоксина в лечении абдоминального сепсиса. Общая реаниматология. 2009; 5 (6): 83-87. DOI: 10.15360/1813-9779-2009-6-83.

46. Ватазин А.В., Зулькарнаев А.Б., Крстич М. Сорбция эндотоксина при сепсисе у больных после трансплантации почки и функция трансплантата. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012; 14 (4): 33-39. DOI: 10.15825/1995-1191-2012-4-33-39.

47. Ярустовский М.Б., Абрамян М.В., Попок З.В., Назарова Е.И., Ступченко О.С., Попов Д.А., Плющ М.Г. Селективная гемоперфузия при грамотрицательном тяжелом сепсисе у больных после кардиохирургических операций. Анестеиология и реаниматология. 2010; 5: 60-65. УДК 615.246.2.03: 616.94-02: 616.12-089.166. Elibrary ID: 15250841. EDN: MVTCEB.

48. Reinhart K., Meier-Hellmann A., Beale R., Forst H., Boehm D., Willatts S., Rothe K.F. et al.; EASy-Study Group. Open randomized phase II trial of an extracorporeal endotoxin adsorber in suspected Gram-negative sepsis. Crit Care Med. 2004; 32 (8): 1662-1668. DOI: 10.1097/01.ccm.0000132902.54925.b5. PMID: 15286541.

49. Соколов А.А., Гендель Л.Л., Попов А.В., Губанова С.Н., Жаровских О.С., Адамова И.Ю., Левашов П.А. ЛПС-адсорбция с использованием отечественных колонок «Токсипак» при лечении тяжелого сепсиса. Сборник мат-лов Х Юбилейной Международной конференции «Актуальные аспекты экстракорпорального очищения крови в интенсивной терапии». М. 2016.

50. Гендель Л.Л., Соколов А.А., Губанова С.Н., Адамова И.Ю., Левашов П.А. Первый клинический опыт применения колонок для ЛПС-адсорбции «ТОКСИПАК» в лечении пациентов с сепсисом. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2017; 14 (5): 42-50. DOI: 10.21292/2078-5658-2017-14-5-42-50.

51. Хорошилов С.Е., Никулин А.В., Бессонов И.В., Морозов А.С., Ярема И.В. Эффективность и безопасность нового изделия для ЛПС-селективной гемосорбции (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2018; 14 (6): 51-60. DOI: 10.15360/1813-9779-2018-6-51-60.

52. Магомедов М.А., Ким Т.Г., Масолитин С.В., Яралян А.В., Калинин Е.Ю., Писарев В.М. Использование сорбента на основе сверхсшитого стирол-дивинилбензольного сополимера с иммобилизованным ЛПС-селективным лигандом при гемоперфузии для лечения пациентов с септическим шоком. Общая реаниматология. 2020; 16 (6): 31-53. DOI: 10.15360/1813-9779-2020-6-31-53.

53. Payen D.M., Guilhot J., Launey Y., Lukaszewicz A.C., Kaaki M., Veber B., Pottecher J. et al.; ABDOMIX Group. Early use of polymyxin B hemoperfusion in patients with septic shock due to peritonitis: a multicenter randomized control trial. Intens Care Med. 2015; 41 (6): 975-984. DOI: 10.1007/s00134-015-3751-z. PMID: 25862039.

54. Кутепов Д.Е., Пасечник И.Н., Вершинина М.Г. Современные возможности лечения сепсиса на основе сорбционных методик (обзор литературы). Лабораторная служба. 2019; 8 (4): 22-28. DOI: 10.17116/labs2019804122.

55. Houschyar K.S., Pyles M.N., Rein S., Nietzschmann I., Duscher D., Maan Z.N., Weissenberg K. et al. Continuous hemoadsorption with a cytokine adsorber during sepsis — a review of the literature. Int J Artif Organs. 2017; 40 (5): 205-211. DOI: 10.5301/ijao.5000591. PMID: 28525674.

56. Akil A., Ziegeler S., Reichelt J., Rehers S., Abdalla O., Semik M., Fischer S. Combined use of cytoSorb and ECMO in patients with severe pneumogenic sepsis. Thorac Cardiovasc Surg. 2021; 69 (3): 246-251. DOI: 10.1055/s-0040-1708479. PMID: 32252114.

57. Poli E.C., Alberio L., Bauer-Doerries A., Marcucci C., Roumy A., Kirsch M., De Stefano E. et al. Cytokine clearance with CytoSorb during cardiac surgery: a pilot randomized controlled trial. Crit Care. 2019; 23 (1): 108. DOI: 10.1186/s13054-019-2399-4. PMID: 30944029.

58. Schädler D., Pausch C, Heise D., Meier-Hellmann A., Brederlau J., Weiler N., Marx G., Putensen C., Spies C., Jorres A, Quintel M., Engel C, Kellum J.A., Kuhlmann M.K. The effect of a novel extracorporeal cytokine hemoadsorption device on IL-6 elimination in septic patients: a randomized controlled trial. PLoS One. 2017; 12 (10): e0187015. DOI: 10.1371/journal.pone.0187015. PMID: 29084247.

59. Friesecke S., Träger K., Schittek G.A., Molnar Z., Bach F., Kogelmann K., Bogdanski R. et al. International registry on the use of the CytoSorb adsorber in ICU patients: study protocol and preliminary results. Med Klin Intensivmed Notfmed. 2019; 114 (8): 699-707. DOI: 10.1007/s00063-017-0342-5. PMID: 28871441.

60. Friesecke S., Stecher S.-S., Gross S., Felix S.B., Nierhaus A. Extracorporeal cytokine elimination as rescue therapy in refractory septic shock: a prospective single-center study. J Artif Organs. 2017; 20 (3): 252-259. DOI: 10.1007/s10047-017-0967-4. PMID: 28589286.

61. Kogelmann K, Jarczak D, Scheller M, Drüner M. Hemoadsorption by CytoSorb in septic patients: a case series. Crit Care. 2017; 21 (1): 74. DOI: 10.1186/s13054-017-1662-9. PMID: 28343448.

62. Poli E.C, Rimmelé T, Schneider A.G. Hemoadsorption with CytoSorb. Intensive Care Med. 2019; 45 (2): 236-239. DOI: 10.1007/s00134-018-5464-6. PMID: 30446798.

63. Stasi A., Franzin R., Divella C., Sallustio F., Curci C., Picerno A., Pontrelli P. et al. PMMA-based continuous hemofiltration modulated complement activation and renal dysfunction in LPS-induced acute kidney injury. Front Immunol. 2021; 12: 605212. DOI: 10.3389/fimmu.2021.605212. PMID: 33868226.

64. Nakada T.A., Oda S., Matsuda K.-I., Sadahiro T., Nakamura M., Abe R., Hirasawa H. Continuous hemodiafiltration with PMMA Hemofilter in the treatment of patients with septic shock. Mol Med. 2008; 14 (5-6): 257-263. DOI: 10.2119/2007-00108.Nakada. PMID: 18327291.

65. Yumoto M., Nishida O., Moriyama K., Shimomura Y., Nakamura T., Kuriyama N., Hara Y. et al. In vitro evaluation of high mobility group box 1 protein removal with various membranes for continuous hemofiltration. Ther Apher Dial. 2011; 15 (4): 385-393. DOI: 10.1111/j.1744-9987. 2011.00971.x. PMID: 21884474.

66. Oshihara W., Fujieda H., Ueno Y. A new poly (methyl methacrylate) membrane dialyzer, NF, with adsorptive and antithrombotic properties. Contrib Nephrol. 2017; 189: 230-236. DOI: 10.1159/000450806. PMID: 27951573.

67. Broman M.E., Hansson F., Vincent J.-L., Bodelsson M. Endotoxin and cytokine reducing properties of the oXiris membrane in patients with septic shock: a randomized crossover double-blind study. PLoS One. 2019; 14 (8): e0220444. DOI: 10.1371/journal.pone.0220444. PMID: 31369593.

68. Malard B., Lambert C., Kellum J.A. In vitro comparison of the adsorption of inflammatory mediators by blood purification devices. Intensive Care Med Exp. 2018; 6 (1): 12. DOI: 10.1186/s40635-018-0177-2. PMID: 29728790.

69. Honore RM, Hoste E, Molnár Z, Jacobs R, Joannes-Boyau O, Malbrain M.L.N.G., Forni L.G. Cytokine removal in human septic shock: where are we and where are we going? Ann Intensive Care. 2019; 9 (1): 56. DOI: 10.1186/s13613-019-0530-y. PMID: 31089920.

70. Xie J., Xiao W., Lin J. Effect of oXiris-CVVH on the clinical outcomes of patients with septic shock: an inverse probability of treatment-weighted analysis. Blood Purif. 2022; Jun 1: 1-18. DOI: 10.1159/000524088. PMID: 35649340.

71. Feng J., Zhang S., Ai T., Wang L., Gao Y., Li W., Zhu M. Effect of CRRT with oXiris filter on hemodynamic instability in surgical septic shock with AKI: a pilot randomized controlled trial. Int J Artif Organs. 2022; 45 (10): 801-808. DOI: 10.1177/03913988221107947. PMID: 35864718.

72. Fissell W.H., Lou L., Abrishami S., Buffington D.A., Humes H.D. Bioartificial kidney ameliorates gram-negative bacteria-induced septic shock in uremic animals. J Am Soc Nephrol. 2003; 14 (2): 454-461. DOI: 10.1097/01.asn.0000045046.94575.96. PMID: 12538747.

73. Mitzner S.R., Freytag J., Sauer M., Kleinfeldt T., Altrichter J., Klöhr S., Koball S. et al. Use of human preconditioned phagocytes for extracorporeal immune support: introduction of a concept. Ther Apher. 2001; 5 (5): 423-432. DOI: 10.1046/j.1526-0968.2001.00378.x. PMID: 11778929.

74. Sauer M., Altrichter J., Kreutzer H.J., Logters T., Scholz M., Noldge-Schomburg G., Schmidt R. et al. Extracorporeal cell therapy with granulocytes in a pig model of Gram-positive sepsis. Crit Care Med. 2009; 37 (2): 606-613. DOI: 10.1097/CCM.0b013e318194aa77. PMID: 19114920.

75. Altrichter J., Sauer M., Kaftan K., Birken T., Gloger D., Gloger M., Henschel J. et al. Extracorporeal cell therapy of septic shock patients with donor granulocytes: a pilot study. Crit Care. 2011; 15 (2): R82. DOI: 10.1186/cc10076. PMID: 21371308.

76. Logters T.T., Altrichter J., Paunel-Gorgulu A., Sager M., Witte I., Ott A., Sadek S. et al. Extracorporeal immune therapy with immobilized agonistic anti-Fas antibodies leads to transient reduction of circulating neutrophil numbers and limits tissue damage after hemorrhagic shock/resuscitation in a porcine model. J Inflamm (Lond). 2010; 7: 18. DOI: 10.1186/1476-9255-7-18. PMID: 20406470.

77. Moreno J.B., Margraf S., Schuller A.M., Simon A., Moritz A., Scholz M. Inhibition of neutrophil activity in cardiac surgery with cardiopulmonary bypass: a novel strategy with the leukocyte inhibition module. Perfusion. 2004; 19 (1): 11-16. DOI: 10.1191/0267659104pf709oa. PMID: 15072250.

78. Kang J.H., Super M., Yung C.W., Cooper R.M., Domansky K., Graveline A.R., Mammoto T. et al. An extracorporeal blood-cleansing device for sepsis therapy. Nat Med. 2014; 20 (10): 1211-1216. DOI: 10.1038/nm.3640. PMID: 25216635.

79. Li Z., Yan X., Wu K., Jiao Y., Zhou C., Yang J. Surface modification of reduced graphene oxide beads: integrating efficient endotoxin adsorption and improved blood compatibility. ACS Appl Bio Mater. 2021; 4 (6): 4896-4906. DOI: 10.1021/acsabm.0c01666. PMID: 35007038.

80. Pickkers P., Vassiliou T., Liguts V., Prato F., Tissieres P., Kloesel S., Turani F. et al. Sepsis management with a blood purification membrane: European experience. Blood Purif. 2019; 47 Suppl 3: 1-9. DOI: 10.1159/000499355. PMID: 30982031.

81. Girardot T, Schneider A., Rimmele T. Blood purification techniques for sepsis and septic AKI. Semin Nephrol. 2019; 39 (5): 505-514. DOI: 10.1016/j.semnephrol.2019.06.010. PMID: 31514914.

82. Snow T.A.C., Littlewood S., Corredor C., Singer M., Arulkumaran N. Effect of extracorporeal blood purification on mortality in sepsis: a meta-analysis and trial sequential analysis. Blood Purif. 2021; 50 (4-5): 462-472. DOI: 10.1159/000510982. PMID: 33113533.

83. Evans L., Rhodes A., Alhazzani W., Antonelli M., Coopersmith C.M., French C., Machado F.R. et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock 2021. Intensive Care Med. 2021; 47 (11): 1181-1247. DOI: 10.1007/s00134-021-06506-y. PMID: 34599691.