Preview

Общая реаниматология

Расширенный поиск

Мониторинг иммунной системы у пациентов в критическом состоянии (обзор)

https://doi.org/10.15360/1813-9779-2024-3-2388

Аннотация

У большинства пациентов в критических состояниях, независимо от их причины, происходит активация врожденного и адаптивного иммунитета. Это зачастую является эпикритическим процессом и приводит к дисфункции органов.

Цель обзора: систематизировать для врачей различных специальностей (анестезиологов-реаниматологов, хирургов, терапевтов, акушеров-гинекологов) информацию о возможностях мониторинга иммунной системы при критических состояниях.

В обзор включили сведения из 83 современных отечественных и зарубежных публикаций (в основном работы 2023 г.), размещенных в свободном доступе и обнаруженных по ключевым словам.

Обобщили современные представления о взаимоотношениях инфекций и иммунной системы человека, клинического применения традиционных маркеров иммунного статуса. Привели данные о новых перспективных маркерах оценки состояния иммунитета у пациентов при различной патологии.

Ограничения исследований связаны с необходимостью дальнейших масштабных клинических испытаний даже самых многообещающих маркеров, а также систематизации данных о них. Кроме того, иммунный мониторинг, вероятно, увеличит стоимость лечения пациентов, в связи с чем должны развиваться менее затратные по сравнению с ним методы исследований.

Заключение. Почти все патологические нарушения организма пациентов в критических состояниях приводят к изменению иммунитета. Ведение пациентов в соответствии с их иммунным профилем ставит задачу: определить персонализированные тактики иммунной стимуляции, лечения, профилактики инфекций. Углубленный мониторинг функции иммунной системы будет способствовать персонализации медицины, а постоянный прогресс современных биологических технологий позволит усовершенствовать его методы.

Об авторах

А. В. Степанов
Читинская государственная медицинская академия Минздрава России
Россия

Степанов Александр Валентинович

672000, г. Чита, ул. Горького, д. 39а



К. Г. Шаповалов
Читинская государственная медицинская академия Минздрава России
Россия

672000, г. Чита, ул. Горького, д. 39а



Список литературы

1. Costabella F., Patel K.B., Adepoju A.V., Singh P., Mahmoud H.A.H., Zafar A., Patel T., et al. Healthcare cost and outcomes associated with surgical site infection and patient outcomes in low- and middle-income countries. Cureus. 2023; 15 (7): e42493. DOI: 10.7759/cureus.42493.

2. Charalampous P., Haagsma J.A., Jakobsen L.S.. Gorasso V., Noguer I., Padron-Monedero A., Sarmiento R., et al. Burden of infectious disease studies in Europe and the United Kingdom: a review of methodological design choices. Epidemiol Infect. 2023; 151: e19. DOI: 10.1017/S0950268823000031. PMID: 36621004.

3. Afzal M.S., Chennuri R.N., Naveed H., Bai B.R., Hanif R., Shahzad Z., Umer M., et al. Comparison of clinical outcomes between culture-positive and culture-negative sepsis and septic shock patients: a meta-analysis. Cureus. 2023; 15 (2): e35416. DOI: 10.7759/cureus.35416. PMID: 36987463.

4. Wang W., Liu C.F. Sepsis heterogeneity. World J Pediatr. 2023; 19 (10): 919–927. DOI: 10.1007/s12519-023-00689-8. PMID: 36735197.

5. Batool M., Galloway-Peña J. Clinical metagenomics-challenges and future prospects. Front Microbiol. 2023; 14: 1186424. DOI: 10.3389/fmicb.2023.1186424. PMID: 37448579.

6. Remick B.C., Gaidt M.M., Vance R.E. Effector-triggered immunity. Annu Rev Immunol. 2023; 41: 453–481. DOI: 10.1146/annurev-immunol-101721-031732. PMID: 36750319.

7. Martins Y.C., Ribeiro-Gomes F.L., Daniel-Ribeiro C.T. A short history of innate immunity. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2023; 118: e230023. DOI: 10.1590/0074-02760230023. PMID: 37162063.

8. Belizaire R., Wong W.J., Robinette M.L., Ebert B.L. Clonal haematopoiesis and dysregulation of the immune system. Nat Rev Immunol. 2023; 23 (9): 595–610. DOI: 10.1038/s41577-023-00843-3. PMID: 36941354.

9. Cron R.Q., Goyal G., Chatham W.W. Cytokine storm syndrome. Annu Rev Med. 2023; 74: 321–337. DOI: 10.1146/annurev-med-042921-112837. PMID: 36228171.

10. Silva E.E., Skon-Hegg C., Badovinac V.P., Griffith T.S. The calm after the storm: implications of sepsis immunoparalysis on host immunity. J Immunol. 2023; 211 (5): 711–719. DOI: 10.4049/jimmunol.2300171. PMID: 37603859.

11. Nasrollahi H., Talepoor A.G., Saleh Z., Vakili M.A., Heydarinezhad O., Karami N., Noroozi M., et al. Immune responses in mildly versus critically ill COVID-19 patients. Front Immunol. 2023; 14: 1077236. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1077236. PMID: 36793739.

12. Li J., Zhang K., Zhang Y., Gu Z., Huang C. Neutrophils in COVID-19: recent insights and advances. Virol J. 2023; 20 (1): 169. DOI: 10.1186/s12985-023-02116-w. PMID: 37533131.

13. Fu X., Liu Z., Wang Y. Advances in the study of immunosuppressive mechanisms in sepsis. J Inflamm Res. 2023; 16: 3967–3981. DOI: 10.2147/JIR.S426007. PMID: 37706064.

14. Zhang W., Fang X., Gao C., Song C., He Y., Zhou T., Yang X., et al. MDSCs in sepsis-induced immunosuppression and its potential therapeutic targets. Cytokine Growth Factor Rev. 2023; 69: 90–103. DOI: 10.1016/j.cytogfr.2022.07.007. PMID: 35927154.

15. Kobayashi S.D., DeLeo F.R., Quinn M.T. Microbes and the fate of neutrophils. Immunol Rev. 2023; 314 (1): 210–228. DOI: 10.1111/imr.13163. PMID: 36345955.

16. Liu S., Duan C., Xie J., Zhang J., Luo X., Wang Q., Liang X., et al. Peripheral immune cell death in sepsis based on bulk RNA and single-cell RNA sequencing. Heliyon. 2023; 9 (7): e17764. DOI: 10.1016/j.heliyon.2023.e17764. PMID: 37455967.

17. Wu H., Tang T., Deng H., Chen D., Zhang C., Luo J., Chen S., et al. Immune checkpoint molecule Tim-3 promotes NKT cell apoptosis and predicts poorer prognosis in sepsis. Clin Immunol. 2023; 254: 109249. DOI: 10.1016/j.clim.2023.109249. PMID: 36736642.

18. Huang L., Zhang X., Fan J., Liu X., Luo S., Cao D., Liu Y., et al. EGFR promotes the apoptosis of CD4+ T lymphocytes through TBK1/Glut1 induced Warburg effect in sepsis. J Adv Res. 2023; 44: 39–51. DOI: 10.1016/j.jare.2022.04.010. PMID: 35618635.

19. Chao Y., Huang W., Xu Z., Li P., Gu S. Effect of RUNX1/FOXP3 axis on apoptosis of T and B lymphocytes and immunosuppression in sepsis. Open Med (Wars). 2023; 18 (1): 20230728. DOI: 10.1515/med-2023-0728. PMID: 37636994.

20. Yu D., Xie Y., Li X. Based on the Hippo signaling pathway to explore the mechanism of autophagy in lung injury of acute respiratory distress syndrome induced by sepsis. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2023; 35 (8): 884–888. DOI: 10.3760/cma.j.cn121430-20220705-00633. PMID: 37593872.

21. Yang L., Zhou L., Li F., Chen X., Li T., Zou Z., Zhi Y., et al. Diagnostic and prognostic value of autophagy-related key genes in sepsis and potential correlation with immune cell signatures. Front Cell Dev Biol. 2023; 11: 1218379. DOI: 10.3389/fcell.2023.1218379. PMID: 37701780.

22. Di C., Du Y., Zhang R. Zhang L., Wang S. Identification of autophagy-related genes and immune cell infiltration characteristics in sepsis via bioinformatic analysis. J Thorac Dis. 2023; 15 (4): 1770–1784. DOI: 10.21037/jtd-23-312. PMID: 37197531.

23. Yang Y.S., Zheng W.J., Liu C.Y., Chen W.-C., Xie W.-Z., He H.- F. Mitophagy-related genes could facilitate the development of septic shock during immune infiltration. Medicine (Baltimore). 2023; 102 (42): e35154. DOI: 10.1097/MD.0000000000035154. PMID: 37861563.

24. Mangalesh S., Dudani S., Malik A. The systemic immuneinflammation index in predicting sepsis mortality. Postgrad Med. 2023; 135 (4): 345–351. DOI: 10.1080/00325481.2022.2140535.PMID: 36287784.

25. Kourilovitch M., Galarza-Maldonado C. Could a simple biomarker as neutrophil-to-lymphocyte ratio reflect complex processes orchestrated by neutrophils? J Transl Autoimmun. 2022; 6: 100159. DOI: 10.1016/j.jtauto.2022.100159. PMID: 37396460.

26. Zhao J., Dai R.S., Chen Y.Z., Zhuang Y.G. Prognostic significance of lymphocyte subpopulations for ICU-acquired infections in patients with sepsis: a retrospective study. J Hosp Infect. 2023; 140: 40-45. DOI: 10.1016/j.jhin.2023.05.022. PMID: 37399906.

27. Plebani M. Why C-reactive protein is one of the most requested tests in clinical laboratories? Clin Chem Lab Med. 2023; 61 (9): 1540–1545. DOI: 10.1515/cclm-2023-0086. PMID: 36745137.

28. Jiang X., Zhang C., Pan Y., Cheng X., Zhang W. Effects of Creactive protein trajectories of critically ill patients with sepsis on in-hospital mortality rate. Sci Rep. 2023; 13 (1): 15223. DOI: 10.1038/s41598-023-42352-2. PMID: 37709919.

29. Ji S.-R., Zhang S.-H., Chang Y., Li H.-Y., Wang M.-Y., Zhu L., et al. C-reactive protein: the most familiar stranger. Immunol. 2023; 210 (6): 699–707. DOI: 10.4049/jimmunol.2200831. PMID: 36881905.

30. Plebani M. Why C-reactive protein is one of the most requested tests in clinical laboratories? Clin Chem Lab Med. 2023; 61 (9): 1540–1545. DOI: 10.1515/cclm-2023-0086. PMID: 36745137.

31. Saura O., Luyt C-.E. Procalcitonin as a biomarker to guide treatments for patients with lower respiratory tract infections. Expert Rev Respir Med. 2023; 17 (8): 651–661. DOI: 10.1080/17476348.2023.2251394. PMID: 37639716.

32. August B.A., Kale-Pradhan P.B., Giuliano C., Johnson L.B. Biomarkers in the intensive care setting: a focus on using procalcitonin and C-reactive protein to optimize antimicrobial duration of therapy. Pharmacotherapy. 2023; 43 (9): 935–949. DOI: 10.1002/phar.2834. PMID: 37300522.

33. Molano-Franco D., Arevalo-Rodriguez I., Muriel A., Del Campo-Albendea L., Fernández-García S., Alvarez-Méndez A., Simancas-Racines D., et al., SEPSIS-BIOMARKERS Collaborators. Basal procalcitonin, C-reactive protein, interleukin-6, and presepsin for prediction of mortality in critically ill septic patients: a systematic review and metaanalysis.. Diagn Progn Res. 2023; 7 (1): 15. DOI: 10.1186/s41512-023-00152-2. PMID: 37537680.

34. Long A., Kleiner A., Looney R.J. Immune dysregulation. J Allergy Clin Immunol. 2023; 151 (1): 70–80. DOI: 10.1016/j.jaci.2022.11.001. PMID: 36608984.

35. Das U.N. Infection, inflammation, and immunity in sepsis. Biomolecules. 2023; 13 (9): 1332. DOI: 10.3390/biom13091332. PMID: 37759732.

36. Afshar Z.M., Barary M., Babazadeh A., Pirzaman A.T., Hosseinzadeh R., Alijanpour A., AllahgholipourA., et al. The role of cytokines and their antagonists in the treatment of COVID-19 patients. Rev Med Virol. 2023; 33 (1): e2372. DOI: 10.1002/rmv.2372. PMID: 35621229.

37. Chen Y., Dong P., Zhang X. [Research advance on the role of pro-inflammatory cytokines in sepsis]. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2023; 35 (2): 212–216. DOI: 10.3760/cma.j.cn121430-20220919-00846. PMID: 36916385.

38. Qin R., He L., Yang Z., Jia N., Chen R., Xie J., Fu W., et al. Identification of parameters representative of immune dysfunction in patients with severe and fatal COVID-19 infection: a systematic review and meta-analysis. Clin Rev Allergy Immunol. 2023; 64 (1): 33–65. DOI: 10.1007/s12016-021-08908-8. PMID: 35040086.

39. Яковенко М. П., Антипин Э. Э., Бочкарева Н. А., Королева Н.И., Дроботова Е.Ф., Недашковский Э.В. Модифицированные блокады надключичного и грудных нервов при имплантации внутривенной портсистемы у онкологических пациентов. Общая реаниматология. 2023; 19 (3): 28–38. DOI: 10.15360/1813-9779-2023-3-28-38.

40. Ратников В. А., Щеглов А. Н., Абрамовский С. В., Симутис И.С., Данилов М.С., Иванова Г.Г., Сыроватский А.А. Предикторы клинической эффективности гемосорбции цитокинов при COVID-19. Общая реаниматология. 2023; 19 (1): 20–26. DOI: 10.15360/1813-9779-2023-1-2224.

41. Румянцев А.Г., Демина О.М., Греченко В.В., Ганковская Л.В., Потекаев Н.Н. Патогенетическое значение семейства ИЛ-10 при акне тяжелой степени. Иммунология. 2023; 44 (4): 463–470. DOI: 10.33029/0206-4952-2023-44-4-463-470.

42. Порошина А.С., Шершакова Н.Н., Шиловский И.П., Кадушкин А.Г., Таганович А.Д., Гудима Г.О., Хаитов М.Р. Роль ИЛ-25, ИЛ-33 и TSLP в развитии кортикостероидной резистентности. Иммунология. 2023; 44 (4): 500–510. DOI: 10.33029/0206-4952-2023-44-4-500-510.

43. Бязрова М.Г., Порошина А.С., Сухова М.М., Фролов Е.А., Шилкина А.Б., Латышева Е.А., Латышева Т.В., с соавт. Продукция цитокинов наивными В-лимфоцитами и В-клетками памяти при стимуляции in vitro. Иммунология. 2023; 44 (5): 575-585. DOI: 10.33029/0206-4952-2023-44-5-575-585.

44. Pham H.M., Nguyen D.L.M., Duong M.C., Tran L.T., Pham T.T.N. Diagnostic value of neutrophil CD64 in sepsis patients in the intensive care unit: a cross-sectional study. Diagnostics (Basel). 2023; 13 (8): 1427. DOI: 10.3390/diagnostics13081427. PMID: 37189528.

45. Han J., Zhang Y., Ge P., Dakal T.C., Wen H., Tang S., Luo Y., et al. Exosome-derived CIRP: an amplifier of inflammatory diseases. Front Immunol. 2023; 14: 1066721. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1066721. PMID: 36865547.

46. Scott J., Trevi L., McNeil H., Ewen T., Mawson P., McDonald D., Filby A., et al. Role of immunosuppression in an antibiotic stewardship intervention and its association with clinical outcomes and antibiotic use: protocol for an observational study (RISC-sepsis). BMJ Open. 2022; 12 (12): e068321. DOI: 10.1136/bmjopen-2022-068321. PMID: 36600326.

47. Zou S., Jie H., Han X., Wang J. The role of neutrophil extracellular traps in sepsis and sepsis-related acute lung injury. Int Immunopharmacol. 2023; 124 (Pt A): 110436. DOI: 10.1016/j.intimp.2023.110436. PMID: 37688916.

48. Ansari M.A., Das S., Rai G., Singh P.K., Lahan S., Tyagi A., Alamer E., et al. Low monocytic HLA-DR expression in critically ill patients of sepsis: an indicator for antimicrobial and/or immunomodulatory intervention. Transpl Immunol. 2023; 81: 101942. DOI: 10.1016/j.trim.2023.101942. PMID: 37866671.

49. Joshi I., Carney W.P., Rock E.P. Utility of monocyte HLA-DR and rationale for therapeutic GM-CSF in sepsis immunoparalysis. Front Immunol. 2023; 14: 1130214. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1130214. PMID: 36825018.

50. Quirant-Sánchez B., Plans-Galván O., Lucas E., Argudo E., Martinez-Cáceres E.M., Arméstar F. HLA-DR expression on monocytes and sepsis index are useful in predicting sepsis. Biomedicines. 2023; 11 (7): 1836. DOI: 10.3390/biomedicines11071836. PMID: 37509475.

51. Ostrand-Rosenberg S., Lamb T.J., Pawelec G. Here, there, and everywhere: myeloid-derived suppressor cells in immunology. J Immunol. 2023; 210 (9): 1183–1197. DOI: 10.4049/jimmunol.2200914. PMID: 37068300.

52. Wang F., Cui Y., He D., Gong L., Liang H. Natural killer cells in sepsis: friends or foes? Front Immunol. 2023; 14: 1101918. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1101918. PMID: 36776839.

53. Etemad B., Sun X., Li Y., Melberg M., Moisi D., Gottlieb R., Ahmed H., et al. HIV post-treatment controllers have distinct immunological and virological features. Proc Natl Acad Sci USA. 2023; 120 (11): e2218960120. DOI: 10.1073/pnas.2218960120. PMID: 36877848.

54. Wu H., Tang T., Deng H., Chen D., Zhang C., Luo J., Chen S., et al. Immune checkpoint molecule Tim-3 promotes NKT cell apoptosis and predicts poorer prognosis in sepsis. Clin Immunol. 2023; 254: 109249. DOI: 10.1016/j.clim.2023.109249. PMID: 36736642.

55. Sohn H., Cooper M.A. Metabolic regulation of NK cell function: implications for immunotherapy. Immunometabolism (Cobham). 2023; 5 (1): e00020. DOI: 10.1097/IN9.0000000000000020. PMID: 36710923.

56. Yao Y.M., Zhang H., Wu Y. [Novel strategy of sepsis immunomodulation targeting dendritic cells]. Zhonghua Shao Shang Yu Chuang Mian Xiu Fu Za Zhi. 2023; 39 (7): 606–611. DOI: 10.3760/cma.j.cn501225-20230321-00087. PMID: 37805688.

57. Zhao F.-Z., Gu W.-J., Li L.-Z., Qu Z.-K., Xu M.-Y., Liu K.,Zhang F., et al. Cannabinoid receptor 2 alleviates sepsis-associated acute lung injury by modulating maturation of dendritic cells. Int Immunopharmacol. 2023; 123: 110771. DOI: 10.1016/j.intimp.2023.110771. PMID: 37582314.

58. Wu Y., Chen L., Qiu Z., Zhang X., Zhao G., Lu Z. PINK1 protects against dendritic cell dysfunction during sepsis through the regulation of mitochondrial quality control. Mol Med. 2023; 29 (1): 25. DOI: 10.1186/s10020-023-00618-5. PMID: 36809929.

59. Bénard A., Hansen F.J., Uhle F., Klösch B., Czubayko F., Mittelstädt A., Jacobsen A., et al. Interleukin-3 protects against viral pneumonia in sepsis by enhancing plasmacytoid dendritic cell recruitment into the lungs and T cell priming. Front Immunol. 2023; 14: 1140630. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1140630. PMID: 36911737.

60. Zhang T., Lian G., Fang W., Tian L., Ma W., Zhang J., Meng Z., et al. Comprehensive single-cell analysis reveals novel anergic antigen-presenting cell subtypes in human sepsis. Front Immunol. 2023; 14: 1257572 DOI: 10.3389/fimmu.2023.1257572. PMID: 37781404.

61. Li J.-B., Xie M.-R., Duan M.-L., Yu Y.-N., Hang C.-C., Tang Z.-R., Li C.-S. Over-expression of programmed death-ligand 1 and programmed death-1 on antigen-presenting cells as a predictor of organ dysfunction and mortality during early sepsis: a prospective cohort study. World J Emerg Med. 2023; 14 (3): 179–185. DOI: 10.5847/wjem.j.1920-8642.2023.041. PMID: 37152526.

62. Turner S., Raisley B., Roach K., Bajaña S., Munroe M.E., James J.A., Coggeshall K.M., et al. Gram-positive bacteria cell wall peptidoglycan polymers activate human dendritic cells to produce IL-23 and IL-1β and promote TH17 cell differentiation. Microorganisms. 2023; 11 (1): 173. DOI: 10.3390/microorganisms11010173. PMID: 36677464.

63. Liu H., Li J.-F., Zhang L.-M., Wang H.-H., Wang X.-Q., Kiu G.-Q., Du H.-B., et al. Posthemorrhagic shock mesenteric lymph impairs splenic dendritic cell function in mice. Shock. 2023; 59 (2): 256–266. DOI: 10.1097/SHK.0000000000002056. PMID: 36427100.

64. Finfer S., Venkatesh B., Hotchkiss R.S., Sasson S.C. Lymphopenia in sepsis- an acquired immunodeficiency? Immunol Cell Biol. 2023; 101 (6): 535–544. DOI: 10.1111/imcb.12611. PMID: 36468797.

65. Winer H., Rodrigues G.O.L, Hixon J.A., Aielo F.B., Hsu T.C., Wachter B.T., Li W., et al. IL-7: comprehensive review. Cytokine. 2022; 160: 156049. DOI: 10.1016/j.cyto.2022.156049. PMID: 36201890.

66. Gao Y., Ya Y., Zhang X., Chen F., Meng X.-L., Chen X.-S., Wang C.-L., et al. Regulatory T cells: angels or demons in the pathophysiology of sepsis? Front. Immunol. 2022; 13: 829210. DOI: 10.3389/fimmu.2022.829210. PMID: 35281010.

67. Li X.-Y., Liu M., Fu Y-.J., Jiang Y.-J., Zhang Z.-N. Alterations in levels of cytokine following treatment to predict outcome of sepsis: a meta-analysis. Cytokine. 2023; 161: 156056. DOI: 10.1016/j.cyto.2022.156056. PMID: 36240721.

68. Wautier J.L., Wautier M.P. Pro- and anti-Inflammatory prostaglandins and cytokines in humans: a mini review. Int J Mol Sci. 2023; 24 (11): 9647. DOI: 10.3390/ijms24119647. PMID: 37298597.

69. Barber G., Tanic J., Leligdowicz A. Circulating protein and lipid markers of early sepsis diagnosis and prognosis: a scoping review. Curr Opin Lipidol. 2023; 34 (2): 70–81. DOI: 10.1097/MOL.0000000000000870. PMID: 36861948.

70. Korzhenevich J., Janowska I., van der Burg M., Rizzi M. Human and mouse early B cell development: So similar but so different. Immunol Lett. 2023; 261: 1–12. DOI: 10.1016/j.imlet.2023.07.004. PMID: 37442242.

71. Dong X., Tu H., Qin S., Bai X., Yang F., Li Z. Insights into the roles of B cells in patients with sepsis. J Immunol Res. 2023; 2023: 7408967. DOI: 10.1155/2023/7408967. PMID: 37128298.

72. Pan B., Sun P., Pei R., Lin F., Cao H. Efficacy of IVIG therapy for patients with sepsis: a systematic review and metaanalysis. J Transl Med. 2023; 21 (1): 765. DOI: 10.1186/s12967-023-04592-8. PMID: 37898763.

73. Du K., Hao S., Luan H. Retracted: expression of peripheral blood DCs CD86, CD80, and Th1/Th2 in sepsis patients and their value on survival prediction. Comput Math Methods Med. 2023; 2023: 9832093. DOI: 10.1155/2023/9832093. PMID: 37416269.

74. Dong X., Tu H., Bai X., Qin S., Li Z. Intrinsic/extrinsic apoptosis and pyroptosis contribute to the selective depletion of B cell subsets in septic shock patients. Shock. 2023; 60 (3): 345–353. DOI: 10.1097/SHK.0000000000002174. PMID: 37477437.

75. Sharma P., Goswami S., Raychaudhuri D., Siddiqui B.A., Singh P., Nagarajan A., Liu J. Immune checkpoint therapycurrent perspectives and future directions. Cell. 2023; 186 (8): 1652–1669. DOI: 10.1016/j.cell.2023.03.006. PMID: 37059068.

76. Liu D., Huang S.Y., Sun J.H., Zhang H.-C., Cai Q.-L., Gao C., Li L. Sepsis-induced immunosuppression: mechanisms, diagnosis and current treatment options. Mil Med Res. 2022; 9 (1): 56. DOI: 10.1186/s40779-022-00422-y. PMID: 36209190.

77. van den Haak D.A.C., Otten L.S., Koenen HJ.PM., Smeets R.L., Piet B., Pickkers P., Kox M., et al. Evidence-based rationale for low dose nivolumab in critically ill patients with sepsis-induced immunosuppression. Clin Transl Sci. 2023; 16 (6): 978–986. DOI: 10.1111/cts.13503. PMID: 37002646.

78. Kim G.-R., Choi J.-M. Current understanding of cytotoxic T lymphocyte antigen-4 (CTLA-4) signaling in T-cell biology and disease therapy. Mol Cells. 2022; 45 (8): 513–521. DOI: 10.14348/molcells.2022.2056. PMID: 35950451.

79. Bailly C., Thuru X., Goossens L., Goossens J.-F. Soluble TIM3 as a biomarker of progression and therapeutic response in cancers and other of human diseases. Biochem Pharmacol. 2023; 209: 115445. DOI: 10.1016/j.bcp.2023.115445. PMID: 36739094.

80. Ibrahim R., Saleh K., Chahine C., Khoury R., Khalife N., Cesne A.L. LAG-3 Inhibitors: novel immune checkpoint inhibitors changing the landscape of immunotherapy. Biomedicines. 2023; 11 (7): 1878. DOI: 10.3390/biomedicines11071878. PMID: 37509517.

81. Sordo-Bahamonde C., Lorenzo-Herrero S., Granda-Díaz R., Martínez-Pérez A., Aguilar-García C., Rodrigo J.P., GarcíaPedrero J.M., et al. Beyond the anti-PD-1/PD-L1 era: promising role of the BTLA/HVEM axis as a future target for cancer immunotherapy. Mol Cancer. 2023; 22 (1): 142. DOI: 10.1186/s12943-023-01845-4. PMID: 37649037.

82. García Melián M.F., Moreno M., Cerecetto H., Calzada V. Aptamer-based immunotheranostic strategies. Cancer Biother Radiopharm. 2023; 38 (4): 246–255. DOI: 10.1089/cbr.2022.0064. PMID: 36603108.

83. Rienzo M., Skirecki T., Monneret G., Timsit J.-F. Immune checkpoint inhibitors for the treatment of sepsis: insights from preclinical and clinical development. Expert Opin Investig Drugs. 2022; 31 (9): 885–894. DOI: 10.1080/13543784.2022.2102477. PMID: 35944174.


Рецензия

Для цитирования:


Степанов А.В., Шаповалов К.Г. Мониторинг иммунной системы у пациентов в критическом состоянии (обзор). Общая реаниматология. 2024;20(3):42-52. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2024-3-2388

For citation:


Stepanov А.V., Shapovalov K.G. Monitoring the Immune System in Critically Ill Patients (Review). General Reanimatology. 2024;20(3):42-52. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2024-3-2388

Просмотров: 631


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1813-9779 (Print)
ISSN 2411-7110 (Online)