Preview

General Reanimatology

Advanced search

Postresuscitative Morphofunctional Changes in the Brain and Retina (Experimental Study)

https://doi.org/10.15360/1813-9779-2008-1-21

Abstract

Objective: to study changes in the microcirculatory bed and in the levels of nitric oxide in the rat brain and retina during a long (35-day) postresuscitative period. Materials and methods. A model of clinical death from acute circulatory arrest was used to evaluate the cerebral and retinal microvessels in the rat brain and retinal histological specimens (stained with hematoxylin-eosin and Indian ink) and to record the content of stable end metabolites of nitric oxide (nitric ions) in the study organs, by employing the Griss reaction. Results. The cerebral circulatory changes were characterized by significantly impaired vascular patency, decreased capillary network density, and a lower capillary diameter, which was most pronounced within the first 24 hours after resuscitation. The microcirculatory retinal circulatory disorders featured the staging of the course: vasodilatation and decreased capillary network density within the first 24 hours after resuscitation, followed by a progressive increase in the density of the capillary network from day 14, as compared with the control, and capillary diameter normalization. The study of nitric oxide metabolites in the cerebral cortex and retina of the experimental animals revealed their accumulation increase, that was statistically significantly 1.5 times greater or more than the control values, within 5 postresuscitative weeks. Conclusion. The long (35-day) postresuscitative period exhibited a heterodirectional change in the size and density of the cerebral and retinal microcirculatory network along with a parallel increase in the level of nitric oxide metabolites in the tissues of the rat cerebral cortex and retina. Key words: postresuscitation disease, cerebral microcirculation, ocular microcirculation, nitric ions.

References

1. Неговский В. А., Мороз В. В.

2. Алексеева Г. В.Особенности клинического течения постгипоксиче-ских энцефалопатий. Анестезиология и реаниматология 2000; 6: 15—20.

3. Семченко В. В., Степанов С. С., Алексеева Г. В.Постаноксическая энцефалопатия. Омск; 1999.

4. Wong T. Y, Klein R.., Marino E. K. et al.Retinal microvascular abnormalities and blood pressure in older people: the Cardiovascular Health Study. Br. J. Ophthalmol. 2002; 86 (9): 1007—1013.

5. Cooper L. S., Wong T. Y., Klein R. et al.Retinal microvascular abnormalities and MRI-defined subclinical cerebral infarction: the atherosclerosis risk in communities study. Stroke 2006; 37 (1): 82—86.

6. Еникеев Д. А., Нургалеева Е. А., Идрисова Л. Т.Влияние предварительной сенсибилизации и перенесенной клинической смерти на динамику морфофункциональных параллелей ретинального и мозгового кровотока. Патол. физиология и эксперим. терапия 1999; 2: 21—23.

7. Еникеев Д. А., Идрисова Л. Т., Еникеева С. А. и соавт.Микроциркуляция мягкой мозговой оболочки и сетчатки глаза в постреанимационном периоде. Уфа; 2004.

8. Корпачев В. Г., Лысенков С. П., Телль Л. З.Моделирование клинической смерти и постреанимационной болезни у крыс. Патол. физиология и эксперим. терапия 1982; 3: 78—80.

9. Идрисова Л. Т., Еникеев Д. А., Байбурина Г. А.Балльная оценка неврологического статуса крыс при алкогольной коме и влияние на

10. Волчегорский И. А., Долгушин И. И., Колесников О. Л.Экспериментальное моделирование и лабораторная оценка адаптивных реакций организма. Челябинск; 2000.

11. Блинков С. Н., Моисеев Ф. Л.Определение плотности капиллярной сети в органах и тканях человека и животных независимо от толщины микротомного среза. Докл. АН СССР 1961; 2: 465—468.

12. Горбачев В. И., Ковалев В. В.Соответствие уровня метаболитов истинному содержанию оксида азота при проведении клинических исследований. Лаб. диагностика 2005; 2: 28—30.

13. Орлова Н. В., Фоломкина А. А., Базян А. С.Поведение крыс в «открытом поле» на следующий день после инъекции галоперидола: зависимость от условий эксперимента. Журн. высш. нервной деятельности 2003; 2: 243—244.

14. Traub O., Berk B. C.Laminar shear stress. Mechanism by which endothelial cells transducer an atheroprotective force. Ather. Thromb. Vasc. Biol. 1998; 18 (5): 677—685.

15. TooperJ. N., Gimbrone M. A.Jr.Blood flow and vascular gene expression: fluid shear stress as a modulator of endothelial phenotype. Rev. Mol. Med. Today 1999; 5 (1): 40—46.

16. Зотова И. В., Затейщиков Д. А., Сидоренко Б. А.Синтез оксида азота и развитие атеросклероза. Кардиология 2002; 4: 58—65.

17. Beauchamp M. H., Sennlaub F., Speranza G. et al.Redox-depended effects of nitric oxide on microvascular integrity in oxygen-induced retinopathy. Free Radic. Biol. Med. 2004; 37 (11): 1885—1894.

18. Федоров А. А.Пренатальное развитие сосудов сетчатой оболочки глаза человека. Вестн. офтальмологии 2003; 4: 59—63.


Review

For citations:


Yenikeyev D.A., Nurgaleyeva Ye.A., Idrisova L.T., Samigullina A.F., Gubaidullin R.M., Laptev O.V. Postresuscitative Morphofunctional Changes in the Brain and Retina (Experimental Study) . General Reanimatology. 2008;4(1):21. (In Russ.) https://doi.org/10.15360/1813-9779-2008-1-21

Views: 1101


Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1813-9779 (Print)
ISSN 2411-7110 (Online)