ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ ПРОЦЕССА РЕГЕНЕРАЦИИ ХРЯЩЕВОЙ ТКАНИ ПОСЛЕ ТРАНСПЛАНТАЦИИ АЛЛОФИБРОБЛАСТОВ

Цель исследования. Обоснование применения эмбриональных аллофибробластов в процессе регенерации хрящевой ткани.

Материал и методы. У 24 половозрелых самцов кроликов породы «Шиншилла» массой 2,3—3,5 кг использовали новую экспериментальную модель разрыва лонного сочленения костей таза с последующим его восстановлением в 3х сериях экспериментов. В 1й серии — после разрушения лонного сочленения реконструктивновосстановительные операции не выполнялись. Во 2й серии восстановление симфиза выполняли при помощи серкляжа из танталовой проволоки диаметром 1,2 мм. В 3й серии — восстановление симфиза выполняли также как во 2й серии, кроме того, в зону повреждения симфиза вводили раствор с выращенными эмбриональными аллофибробластами. Кусочки хрящевой ткани фиксировали в 10процентном нейтральном формалине и заливали в парафин. Гистологические срезы окрашивали гематоксилином, эозином и по ВанГизону. Продолжительность экспериментов — 7, 14, 21 и 30 дней.

Результаты. После разрыва лонного сочленения костей таза хрящевая ткань подвергается альтеративным изменениям с последующим образованием разновеликих дольчатых хондроматозных узелков и склероза окружающих мышечной и костной тканей. Результаты морфологического исследования во 2й серии экспериментов свидетельствуют о формировании смешанной первичной мозоли, состоящей из соединительнотканных и хондроматозных тканевых элементов. 3я серия эксперимента показала, что в зоне повреждения лонного сочленения в течение 4х недель формируется соединительная ткань, имеющая интенсивную базофильную окраску. В окружающих мягкотканых структурах также отмечалось образование соединительной ткани с последующим формированием хрящевых клеток.

Заключение. Процесс формирования хрящевой ткани в зоне разрыва лонного сочленения свидетельствует о стимулирующем влиянии аллогенных фибробластов на процесс регенерации хрящевой ткани в эксперименте, что создает предпосылки для применения данного метода в клинической практике.

1. Аврущенко М.Ш., Острова И.В., Волков А.В. Постреанимационные изменения экспрессии глиального нейротрофического фактора (GDNF): взаимосвязь с повреждением клеток Пуркинье мозжечка (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 59—68. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201455968

2. Савилов П.Н., Молчанов Д.В. Влияние гипербарической оксигенации на аммиакэкскретирующую функцию почек при резекции печени в эксперименте. Общая реаниматология. 2015; 11 (2): 56—63. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201525663

3. Mahmoudi Rad M., Talebpour Amiri F., Mirhoseini M., Ghasemi M., Mirzaei M., Mosaffa N. Application of allogeneic fibroblast cultured on acellular amniotic membrane for fullthickness wound healing in rats. Wounds. 2016; 28 (1): 14—19. PMID: 26779806

4. Larsen M., Willems W.F., Pelzer M., Friedrich P.F., Dadsetan M., Bishop A.T. Fibroblast growth factor2 and vascular endothelial growth factor mediated augmentation of angiogenesis and bone formation in vascularized bone allotransplants. Microsurgery. 2014; 34 (4): 301—307. http://dx.doi.org/10.1002/micr.22221. PMID: 24395434

5. Sindberg G.M., Lindborg B.A., Wang Q., Clarkson C., Graham M., Donahue R., Hering B.J., Verfaillie C.M., BansalPakala P., O’Brien T.D. Comparisons of phenotype and immunomodulatory capacity among rhesus bonemarrowderived mesenchymal stem/stromal cells, multipotent adult progenitor cells, and dermal fibroblasts. J. Med. Primatol. 2014; 43 (4): 231—241. http://dx.doi.org/10.1111/jmp.12122. PMID: 24825538

6. Larijani B., Ghahari A., Warnock G.L., Aghayan H.R., Goodarzi P., Falahzadeh K., Arjmand B. Human fetal skin fibroblasts: Extremely potent and allogenic candidates for treatment of diabetic wounds. Med. Hypotheses. 2015; 84 (6): 577—579. http://dx.doi.org/10.1016/j.mehy.2015.03.004. PMID: 25784640

7. Teklemariam T., Zhao L., Hantash B.M. Heterologous expression of mutated HLAG1 reduces alloreactivity of human dermal fibroblasts. Regen. Med. 2014; 9 (6): 775—784. http://dx.doi.org/10.2217/rme.14.58. PMID: 25431913

8. Арсеньев И.Г., Берченко Д.С., Уразгильдеев Г.Н. Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины. СПб.; 2007:379—381.

9. Бобро Л.И. Фибробласты и их значение в тканевых реакциях. Арх. патологии. 1990; 52 (12): 65—68. PMID: 2091587

10. Гололобов В.Г. Регенерация костной ткани при заживлении огнестрельных переломов. СПб.: Петербург — XXI век; 1997: 160.

11. Еремеев А.В., Светлаков А.В., Большаков И.H., Власов А.А., Арапова В.А. Функции культивируемых эмбриональных клеток на коллагенхитозановой матрице. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2009; 4 (2): 55—62.

12. Озерская О.С., Щеголев В.В. Экспериментальные подходы к обоснованию применения клеточных композиций на основе фибробластов в дерматокосметологии. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2008; 3 (2): 66—67.

13. Швед Ю.Л., Кухарева Л.В., Зорин И.М., Соловьев A.Ю., Блинова М.И., Билибин А.Ю., Пинаев Г.П. Разработка полимерной подложки для культивирования фибробластов кожи человека. Цитология. 2006; 2: 161—168. PMID: 16737184

14. Кассин В.Ю., Абоянц Р.К., Миронова Л.Л., Конюшко О.И., Николаев М.П., Васильев А.В., Житков И.Л. Экспериментальное изучение реакции соединительной ткани на имплантацию гидрогелей с инкорпорированными фибробластами. Биотехнология. 2004; 6: 71—75.

15. Расулов М.Ф. Использование мезенхимальных стволовых клеток костного мозга и эмбриональных фибробластов в лечении ожоговых ран. Тихоокеанский мед. журнал. 2004; 1: 7—9.

16. Sonobe M., Hattori K., Tomita N., Yoshikawa Т., Aoki H., Takakura Y., Suguro T. Stimulatory effects of statins on bone marrowderived mesenchymal stem cells. Study of a new therapeutic agent for fracture. Biomed. Mater. Eng. 2005; 15 (4): 261—267. PMID: 16010034

17. Lin C., Sun J.S., Hou S.M. External fixation with or without supple mentary intramedullary Kirschner wires in the treatment of distal radial fractures. Can. J. Surg. 2004; 47 (6): 431—437. PMID: 15646442

18. Mangano C., Bartolucci E.G., Mazzocco C. A new porous hydroxyapatite for promotion of bone regeneration in maxillary sinus augmentation: clinical and histologic study in humans. Int. J. Oral Maxillofac. Implants. 2003; 18 (1): 23—30. PMID: 12608665

19. Qu S.X., Guo X., Weng J., Cheng J.C.Y., Feng В., Yeung H.Y., Zhang X.D. Evaluation of the expression of collagen type I in porous calcium phosphate ceramics implanted in an extraosseous site. Biomaterials. 2004; 25 (4): 659—667. PMID: 14607504

20. Уразметова М. Д., Шек А.А. Способ лечения ожогов и ран. Патент Республики Узбекистан №4995. 1998.