Preview

Общая реаниматология

Расширенный поиск

Кислородный режим и обмен аммиака в сенсомоторной коре головного мозга кошек при кровопотере и гипербарической оксигенации

https://doi.org/10.15360/1813-9779-2020-2-64-76

Полный текст:

Аннотация

Цель исследования — изучить влияние гипербарической оксигенации (ГБО) на кислородный режим и обмен аммиака в головного мозге кошек при геморрагическом шоке.

Материал и методы. В опытах на 164 кошках (самцы) исследовали влияние ГБО (3 ата, 50 мин) на кровоток (МКТ), напряжение кислорода (РО2), содержание аммиака (Ам), глутамина (Гн), глутамата (Гт), α-кетоглутарата (α-КГ), активность глутаматдегидрогеназы (ГДГ), глутаминсинтетазы (ГС), фосфатзависимой глутаминазы (ФЗГ) в сенсомоторной коре головного мозга (СКГМ); содержание Ам, Гн и показатели кислородного режима в артериальной крови и венозной крови сагиттального синуса при геморрагическом шоке, вызванном дробным кровопусканием (a.femoralis, 10 мл/кг/10 мин в среднем объеме 24±0,8 мл/кг). Кровопускание прекращали при снижении систолического артериального давления до 60,0±1,5 мм рт. ст. ГБО начинали на 10 минуте постгеморрагического периода и проводили в режиме 3 ата, 60 мин.

Результаты. Снижение МКТ и РО2 в СКГМ развиваются уже на 10-й минуте, прогрессируя в стадию декомпенсации геморрагического шока (60±14 мин). Накопление Ам в СКГМ в стадию декомпенсации геморрагического шока происходит на фоне стимуляции активности ФЗГ и ГДГ, угнетения активности ГС и дефицита α-кетоглутарата. ГБО, не устраняя гипоксию в СКГМ, предотвращает: развитие стадии декомпенсации у животных с геморрагическим шоком, патологическое накопление Ам и снижение активности ГС в СКГМ, увеличивая инкрецию из нее в кровь глутамина. В условиях ГБО сохраняется стимулирующее влияние гипоксии на активность ГДГ, но концентрация глутамата остается в пределах нормы, как и активность ФЗГ.

Заключение. Гипербарическая оксигенация, не устраняя гипоксию в СКГМ, которая развивается при геморрагическом шоке, предотвращает нарушение обмена в ней аммиака, вызванное острой невозмещенной кровопотерей.

Об авторах

В. Н. Яковлев
Воронежский государственный университет им. Н. Н. Бурденко
Россия
394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д.10 


П. Н. Савилов
Тамбовская Центральная районная больница
Россия

Павел Николаевич Савилов

Тамбовская область, Тамбовский район, с. Покрово-Пригородное, ул. Полевая, д. 4



Список литературы

1. Мороз В.В., Рыжков И.А. Острая кровопотеря: региональный кровоток и микроциркуляция (Обзор часть I). Общая реаниматология. 2016; 12 (2): 66–89. DOI: 10.15360/1813-9779-2016-2-66-89

2. Яковлев В.Н., Савилов П.Н., Булгакова Я.В. Метаболизм глутамата в структурах головного мозга при экспериментальном геморрагическом шоке. Общая реаниматология. 2017; 13 (1): 6–16. DOI: 10.15360/1813-9779-2017-1-6-16

3. Бояринов Г.А., Симутис И.С., Никольский В.О., Дерюгина А.В., Бояринова Л.Я., Гордецов А.С., Кузнецов А.Б. Роль трансфузии озонированной эритроцитарной массы в восстановлении морфологических изменений миокарда при кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2018; 14 (3): 27–35. DOI: 10.15360/1813-9779-2018-3-27-35.

4. Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В., Новодержкина И.С. Влияние перфторана на регуляцию кожного кровотока при острой кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2015; 14 (6): 19–27. DOI: 10.15360/1813-9779-2015-6-19-27.

5. Йовенко И.А., Кобеляцкий Ю.Ю., Царев А.В., Кузьмиова Е.А., Клименко К.А., Дубовская Л.Л., Селезнева У.В. Интенсивная терапия кровопотери, коагулопатии и гиповолемического шока при политравме Медицина неотложных состояний. 2016; 75 (4): 64–71.

6. Савилов П.Н. Влияние гипербарической оксигенации на азотистый метаболизм в селезенке при резекции печени на фоне хронического тетрахлорметанового гепатита. Биологический журнал Армении 2017; 69 (1): 39–46

7. Савилов П.Н. Влияние гипербарической оксигенации на образование мочевины оперированной печенью Медицина Кыргызстана 2018; 1: 92–97.

8. Лебедева Е.А., Беляевский С.А., Каминский М.Ю., Скобло М.Л., Хан Е.А. Эффективность и безопасность целевого применения эпоэтина альфа, цитофлавина и гипербарической оксигенации в интенсивном лечении тяжелой сочетанной травмы Анестезиология и реаниматология. 2015; 4: 73.

9. Звягин Г.В., Зезикова Е.И., Ромасенко М.В. Организация и принципы работы отделения ГБО в структуре многопрофильного стационара скорой медицинской помощи Многопрофильный стационар.2019: 6; 1 (9): 23–26.

10. Лучаков Ю.И., Москвин А.Н., Шабанов П.Д. Влияние кровотока на насыщение ткани мозга кислородом при гипербарической оксигенации Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2015; 13 (4): 37–41.

11. Гречин В.В. Изучение локального кровотока в глубоких структурах и коре головного мозга. Методы клинической нейрофизиологии — Л.: Наука, 1977: 163–176.

12. Березовский В.А. Напряжение кислорода в тканях животных и человека. Киев: Наукова думка, 1975.

13. Силакова А.И., Трубин Г.П., Явликова А.И. Микрометод определения аммиака и глутамина в тканевых трихлоруксусных экстрактах. Вопросы медицинской химии. 1962; 8 (5): 538–544.

14. Harris M. Studies regenerating a glutamine-like substance in blood and spinal fluid, including a method for its quantitative determination. J. Clin. Invest. 1943; 22 (4): 569–576.

15. Bernt E., Bergmeyer H.U. L-glutamatbestimmung mit GDH und NAD Metoden der enzym. Analyse-Herausg. H.U. Bergmeyer-Weincheim/Bergs Verlag. Chemie 1974; 2: 1749–1752.

16. Keller H., Muller-Beisenritz M., Neumann E. Eine Methode zur Ammoniakbestimmung in Capillarblut. Klin. Wsch.: 1967; 15: 314–319.

17. Schmidt E., Schmidt F.W. Glutamate dehydrogenase Metoden der enzym. Analyse-Herausg. H.U. Bergmeyer-Weincheim/Bergs Verlag. Chemie 1983: 3: 216–227.

18. Beaton J.R., Ozava G. Activity of liver glutaminases in vitamin B6-dificient rats J. Biol. Chem. 1955; 214 (2): 685–691. PMID: 14381406

19. Пушкин А.В., Евстигнеева З.Г., Кретович В. Л. Определение активности глутаминсинтетазы в экстрактах из семян гороха по образованию ортофосфата Прикладная биохимия и микробиология 1972; 3 (1): 96–90.

20. Jonson D., Lardy I. Method in Enzimology — N.Y. 1972; 10: 94–102.

21. Hartree E.F. Determination of protein a modification of the Loury method that gives a linear photometric respons Anal. Biochem. 1972; 43 (2): 422–427. PMID: 4115981.

22. Glantz St. A. Primer of Biostatistics N.Y.: McGraw-Hill Inc,1994. ISBN 0-07-024268-2

23. Леонов А.Н. Гипероксия. Адаптация. Саногенез Воронеж: ВГМА: 2006: 190. ISBN5-91132-003-7.

24. Косенко Е.А., Каминский Ю.Г. Клеточные механизмы токсичности аммиака М.: ЛКИ,2007. ISBN 978-5-382-00524-9

25. Лопачев А.В., Лопачева О.М.Аккуратов Е.Е., Стволинский С.Л., Федорова Т.Н. Карнозин защищает первичную культуру клеток мозжечка от острой токсичности NMDA. Нейрохимия 2017; 34 (1): 49–53.

26. Ssavilov P. Der Arginaseaktivitӓtzustand von hepatozyten bei verschiedenen Arten der Leberschӓdigung und Hyperoxia Ӧsterreichisches Multiscience Journal 2019; 1 (20): 37–42.

27. Орлов Ю.П. О токсичности кислорода и роли сукцинатов, как природного фактора защиты СПб: Тактик-Студио, 2017. ISBN: 978-5-91644-123–129.

28. Savilov P. Some aspects of Leonov’s teachings on the hyperoxic sanogenesis Norwegian Journal of development of the International Science 2019; 1 (33): 22–31.


Для цитирования:


Яковлев В.Н., Савилов П.Н. Кислородный режим и обмен аммиака в сенсомоторной коре головного мозга кошек при кровопотере и гипербарической оксигенации. Общая реаниматология. 2020;16(2):64-76. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2020-2-64-76

For citation:


Yakovlev V.N., Savilov P.N. Oxygen Regime and Exchange of Ammonia in the Sensomotor Cortex of Cats During Blood Loss and Hyperbaric Oxygenation. General Reanimatology. 2020;16(2):64-76. (In Russ.) https://doi.org/10.15360/1813-9779-2020-2-64-76

Просмотров: 120


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1813-9779 (Print)
ISSN 2411-7110 (Online)