Кислородный режим и обмен аммиака в сенсомоторной коре головного мозга кошек при кровопотере и гипербарической оксигенации

Цель исследования — изучить влияние гипербарической оксигенации (ГБО) на кислородный режим и обмен аммиака в головного мозге кошек при геморрагическом шоке.

Материал и методы. В опытах на 164 кошках (самцы) исследовали влияние ГБО (3 ата, 50 мин) на кровоток (МКТ), напряжение кислорода (РО₂), содержание аммиака (Ам), глутамина (Гн), глутамата (Гт), α-кетоглутарата (α-КГ), активность глутаматдегидрогеназы (ГДГ), глутаминсинтетазы (ГС), фосфатзависимой глутаминазы (ФЗГ) в сенсомоторной коре головного мозга (СКГМ); содержание Ам, Гн и показатели кислородного режима в артериальной крови и венозной крови сагиттального синуса при геморрагическом шоке, вызванном дробным кровопусканием (a.femoralis, 10 мл/кг/10 мин в среднем объеме 24±0,8 мл/кг). Кровопускание прекращали при снижении систолического артериального давления до 60,0±1,5 мм рт. ст. ГБО начинали на 10 минуте постгеморрагического периода и проводили в режиме 3 ата, 60 мин.

Результаты. Снижение МКТ и РО₂ в СКГМ развиваются уже на 10-й минуте, прогрессируя в стадию декомпенсации геморрагического шока (60±14 мин). Накопление Ам в СКГМ в стадию декомпенсации геморрагического шока происходит на фоне стимуляции активности ФЗГ и ГДГ, угнетения активности ГС и дефицита α-кетоглутарата. ГБО, не устраняя гипоксию в СКГМ, предотвращает: развитие стадии декомпенсации у животных с геморрагическим шоком, патологическое накопление Ам и снижение активности ГС в СКГМ, увеличивая инкрецию из нее в кровь глутамина. В условиях ГБО сохраняется стимулирующее влияние гипоксии на активность ГДГ, но концентрация глутамата остается в пределах нормы, как и активность ФЗГ.

Заключение. Гипербарическая оксигенация, не устраняя гипоксию в СКГМ, которая развивается при геморрагическом шоке, предотвращает нарушение обмена в ней аммиака, вызванное острой невозмещенной кровопотерей.

1. Мороз В.В., Рыжков И.А. Острая кровопотеря: региональный кровоток и микроциркуляция (Обзор часть I). Общая реаниматология. 2016; 12 (2): 66–89. DOI: 10.15360/1813-9779-2016-2-66-89

2. Яковлев В.Н., Савилов П.Н., Булгакова Я.В. Метаболизм глутамата в структурах головного мозга при экспериментальном геморрагическом шоке. Общая реаниматология. 2017; 13 (1): 6–16. DOI: 10.15360/1813-9779-2017-1-6-16

3. Бояринов Г.А., Симутис И.С., Никольский В.О., Дерюгина А.В., Бояринова Л.Я., Гордецов А.С., Кузнецов А.Б. Роль трансфузии озонированной эритроцитарной массы в восстановлении морфологических изменений миокарда при кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2018; 14 (3): 27–35. DOI: 10.15360/1813-9779-2018-3-27-35.

4. Рыжков И.А., Заржецкий Ю.В., Новодержкина И.С. Влияние перфторана на регуляцию кожного кровотока при острой кровопотере (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2015; 14 (6): 19–27. DOI: 10.15360/1813-9779-2015-6-19-27.

5. Йовенко И.А., Кобеляцкий Ю.Ю., Царев А.В., Кузьмиова Е.А., Клименко К.А., Дубовская Л.Л., Селезнева У.В. Интенсивная терапия кровопотери, коагулопатии и гиповолемического шока при политравме Медицина неотложных состояний. 2016; 75 (4): 64–71.

6. Савилов П.Н. Влияние гипербарической оксигенации на азотистый метаболизм в селезенке при резекции печени на фоне хронического тетрахлорметанового гепатита. Биологический журнал Армении 2017; 69 (1): 39–46

7. Савилов П.Н. Влияние гипербарической оксигенации на образование мочевины оперированной печенью Медицина Кыргызстана 2018; 1: 92–97.

8. Лебедева Е.А., Беляевский С.А., Каминский М.Ю., Скобло М.Л., Хан Е.А. Эффективность и безопасность целевого применения эпоэтина альфа, цитофлавина и гипербарической оксигенации в интенсивном лечении тяжелой сочетанной травмы Анестезиология и реаниматология. 2015; 4: 73.

9. Звягин Г.В., Зезикова Е.И., Ромасенко М.В. Организация и принципы работы отделения ГБО в структуре многопрофильного стационара скорой медицинской помощи Многопрофильный стационар.2019: 6; 1 (9): 23–26.

10. Лучаков Ю.И., Москвин А.Н., Шабанов П.Д. Влияние кровотока на насыщение ткани мозга кислородом при гипербарической оксигенации Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2015; 13 (4): 37–41.

11. Гречин В.В. Изучение локального кровотока в глубоких структурах и коре головного мозга. Методы клинической нейрофизиологии — Л.: Наука, 1977: 163–176.

12. Березовский В.А. Напряжение кислорода в тканях животных и человека. Киев: Наукова думка, 1975.

13. Силакова А.И., Трубин Г.П., Явликова А.И. Микрометод определения аммиака и глутамина в тканевых трихлоруксусных экстрактах. Вопросы медицинской химии. 1962; 8 (5): 538–544.

14. Harris M. Studies regenerating a glutamine-like substance in blood and spinal fluid, including a method for its quantitative determination. J. Clin. Invest. 1943; 22 (4): 569–576.

15. Bernt E., Bergmeyer H.U. L-glutamatbestimmung mit GDH und NAD Metoden der enzym. Analyse-Herausg. H.U. Bergmeyer-Weincheim/Bergs Verlag. Chemie 1974; 2: 1749–1752.

16. Keller H., Muller-Beisenritz M., Neumann E. Eine Methode zur Ammoniakbestimmung in Capillarblut. Klin. Wsch.: 1967; 15: 314–319.

17. Schmidt E., Schmidt F.W. Glutamate dehydrogenase Metoden der enzym. Analyse-Herausg. H.U. Bergmeyer-Weincheim/Bergs Verlag. Chemie 1983: 3: 216–227.

18. Beaton J.R., Ozava G. Activity of liver glutaminases in vitamin B6-dificient rats J. Biol. Chem. 1955; 214 (2): 685–691. PMID: 14381406

19. Пушкин А.В., Евстигнеева З.Г., Кретович В. Л. Определение активности глутаминсинтетазы в экстрактах из семян гороха по образованию ортофосфата Прикладная биохимия и микробиология 1972; 3 (1): 96–90.

20. Jonson D., Lardy I. Method in Enzimology — N.Y. 1972; 10: 94–102.

21. Hartree E.F. Determination of protein a modification of the Loury method that gives a linear photometric respons Anal. Biochem. 1972; 43 (2): 422–427. PMID: 4115981.

22. Glantz St. A. Primer of Biostatistics N.Y.: McGraw-Hill Inc,1994. ISBN 0-07-024268-2

23. Леонов А.Н. Гипероксия. Адаптация. Саногенез Воронеж: ВГМА: 2006: 190. ISBN5-91132-003-7.

24. Косенко Е.А., Каминский Ю.Г. Клеточные механизмы токсичности аммиака М.: ЛКИ,2007. ISBN 978-5-382-00524-9

25. Лопачев А.В., Лопачева О.М.Аккуратов Е.Е., Стволинский С.Л., Федорова Т.Н. Карнозин защищает первичную культуру клеток мозжечка от острой токсичности NMDA. Нейрохимия 2017; 34 (1): 49–53.

26. Ssavilov P. Der Arginaseaktivitӓtzustand von hepatozyten bei verschiedenen Arten der Leberschӓdigung und Hyperoxia Ӧsterreichisches Multiscience Journal 2019; 1 (20): 37–42.

27. Орлов Ю.П. О токсичности кислорода и роли сукцинатов, как природного фактора защиты СПб: Тактик-Студио, 2017. ISBN: 978-5-91644-123–129.

28. Savilov P. Some aspects of Leonov’s teachings on the hyperoxic sanogenesis Norwegian Journal of development of the International Science 2019; 1 (33): 22–31.